Аллергия на trichoderma viride у подростков

Содержание страницы:

Триходерма

Общее описание

Гриб Trichoderma является нитевидным, свободно живущим типом грибов, которые являются коллективными и распространены в большинстве почв и в «корневых экосистемах», во всем мире.

Trichoderma были найдены в прериях, в лесах, на солончаках, в песках пустыни, в водах озер. Они заселяли мертвый растительный материал, семена и были даже в воздухе. Они также найдены в массе живых корней, практически у любого растения. «Био-контроль грибной» из Trichoderma разработал удивительную способность взаимодействовать, как паразитический, так и с симбиотический тип, в различных субстратах, с разными типами растений, и с другими микроорганизмами.

Сегодня всё более в сельском хозяйстве используется Trichoderma, чем любой иной микроб или грибок. Есть много эффективных видов Trichoderma. До сих пор имеется только 7 важных видов Trichoderma, которые используются коммерчески, но с каждым годом добавляются в список новые виды:

Порядок воздействия грибка Trichoderma

Главное свойство Триходермы, приведшее их к славе микробного хищника, это обладание высокой антагонистической активностью, большей, чем у других грибов. Они являются специалистами в уничтожении других грибов токсином. Затем они потребляют свою добычу, растворяя её с помощью экссудат-литических ферментов. Это хищническое поведение привело к использованию их для контроля иных грибковых заболеваний у растений. Интересно, что этот грибок не имеет негативного влияния на микоризу. Микоризные грибки являются еще одним очень полезным элементом в ризосфере. Недавнее исследование Корнельского университета оказалось весьма интересным, оно обнаружило, что функция управления заболеванием с помощью грибка Trichoderma является лишь верхушкой айсберга. В действительности, Trichoderma имеет достаточно хорошо оформленный симбиоз с корнями растений. Она не только подавляет прочие грибки, но подаёт соединения азота к корням растений так же, как микоризные грибки.

Trichoderma устанавливает надежные и длительные колонизации корневых поверхностей и проникает в эпидермис и несколько клеток ниже этого уровня. Затем она выделяет различные соединения, которые индуцируют локализованные или системные реакции резистентности. Это объясняет отсутствие патогенности для растений. Эти ассоциации вызывают существенные изменения у растительного «протеома» и метаболизма в растении. Недавнее открытие состоит в том, что некоторые штаммы побуждают растения «включать» свои собственные защитные механизмы, создавая впечатление, что Trichoderma также будет контролировать патогены, кроме грибов. Растения защищены от многочисленных классов возбудителей растений ответами, которые похожи на системную, приобретенную резистентность и индуцированную ризобактерией системную резистентность.
Trichoderma Fungus Способ применения
Trichoderma обычно поставляется в виде культуры, разработанной на размягченном рисе. Поместите килограмм этого инокулированного риса в бесцветную дехлорированную воду, вместе с 5 мл любого доступного «прерывателя поверхностного натяжения». Дайте ему «отлежатся» в течение часа, или около того, чтобы еще больше смягчить рис. Измельчите рис между руками, чтобы освободить гриб от риса. Сделайте это шлифование в течение нескольких минут, пока Trichoderma практически не смывается с риса. В этот момент рис станет гораздо более светлым, с оттенком сине-зеленого. Процедите жидкость на очень мелкоячеистой сетке, чтобы вынуть более крупные кусочки риса. Это важно, только если вы собираетесь распылять жидкость на филосферу растений, защита от плесеней, так распылительная головка не забьётся. Если же его применять в качестве пропитывания по корням, очевидно, не будет необходимости в предварительном процеживании.

Таксономия и генетика

Большинство Trichoderma штаммы не имеют половой стадии и могут производить только бесполые споры. Тем не менее, в течение нескольких циклов, половая стадия известна, но не входит в число штаммов, которые обычно рассматривались для целей биоконтроля. Большинство штаммов высоко адаптированы к бесполому жизненному циклу. Разные процессы способствуют вариации между ядрами в одном организме (слоевище). Оттого хорошо адаптируется и быстро развиваться триходерма. Существует большое разнообразие в генотипе и фенотипе диких штаммов Триходермы.

В то время как дикие штаммы являются очень гибкими, и могут быть гетерокариотами (содержат ядра разнородных генотипов в пределах одного организма), и, следовательно, сильно варьируют, штаммы, используемые для био-управления в коммерческом сельском хозяйстве гомокариотны (ядра внутри генетически подобны или идентичны). Это чрезвычайно важный элемент контроля качества для любой компании, желающей коммерциализацию этих организмов.

Использование Trichoderma

Эти универсальные грибы используются на коммерческой основе в различных формах, в том числе следующие:

для производства целлюлозы и разрушения сложных полисахаридов;

для обработки джинсовой ткани, чтобы сделать её мягкой, «забеленной» типа «вареный деним»;

Триходерма вериде: инструкция по применению

Достижения современной науки успешно внедряются в практику земледелия, и достойный тому пример — препарат Триходерма вериде: инструкция по его применению открывает широкие возможности для садоводов и огородников. Безвредный для человека и экологии в целом, помощник-биофунгицид Триходерма вериде активно подавляет почвенные инфекции. Его эффективность на дачных землях зависит от чёткого соблюдения инструкции, ведь действующими компонентами являются живые микроорганизмы.

При профилактическом применении Триходермы вериде — растения меньше болеют; повышается урожайность овощных и плодовых культур, возрастает декоративность цветов. Помимо защиты от почвенных патогенов, наблюдается стимулирование общего иммунитета растений. Кроме того, препарат активизирует разложение органических остатков (повышая плодородие земли) и ускоряет перепревание компостной массы. Средство удобно в применении: согласно инструкции, раствор используется при поливе растений и для замачивания семян.

Состав и принцип работы

Препарат — это порошок, содержащий миллиарды сухих спор микрогрибка Trichoderma veride. Попадая во влажную и тёплую среду (почву), они прорастают, размножаются и образуют невидимые глазу колонии. Этот вид грибка безвреден для растений, поскольку не питается их живыми тканями (в отличие от патогенных микробов).

Колонии Триходерма вериде активно перерабатывают мёртвую почвенную органику (растительные остатки, навоз и др.), очень быстро разрастаются и агрессивно вытесняют другие виды грибков. Так происходит уменьшение не только сугубо почвенных инфекций, но и других вредоносных микроорганизмов, чьи споры попадают в верхний почвенный слой (летом или на зимовку). Попутно Триходерма выделяет в окружающую среду вещества, которые являются природными антибиотиками и стимуляторами для растений.

Достижимые результаты Триходермы вериде

Применяя Триходерму вериде на своём земельном участке, мы обеспечиваем:

  1. Общее оздоровление почвы, улучшение её структуры и влагоёмкости.
  2. Снижение вреда от различных грибковых инфекций, особенно корневых и прикорневых.
  3. Быстрое перепревание растительных остатков растений, переход макро- и микроэлементов в доступные формы.
  4. Увеличение массы корней (особенно питающих корешков) примерно в 3 — 4 раза, лучший прирост надземной массы.

Декоративные культуры выглядят пышнее и красивее. По овощам наблюдается рост урожайности на 10 — 30 %.

Объекты воздействия препарата

Полезно массовое заселение тепличного и уличного грунта Триходермой вериде — с максимальным охватом территории. Это работа на многолетнюю перспективу. А для достижения конкретных и быстрых результатов в борьбе с определёнными болезнями — нужны прицельные удары. Расширенная инструкция рекомендует профилактическое (заблаговременное, защитное) применение препарата на таких культурах, как:

  • ОГУРЦЫ — тепличные и грунтовые (от прикорневых и корневых заболеваний, приводящих к увяданию);
  • ПОМИДОРЫ и БАКЛАЖАНЫ — в закрытом и открытом грунте (от трахеомикозного увядания, серой гнили и т. п.);
  • КАРТОФЕЛЬ (от ризоктониоза, «чёрной ножки»);
  • МОРКОВЬ, РЕДИС, РЕДЬКА;
  • ЛУК, в том числе при выгонке на перо (от белой плесени, фузариоза и др.);
  • КАПУСТА (против прикорневых гнилей; вот только от КИЛЫ вряд ли спасёт);
  • САЛАТ и другая зелень (от гниения);
  • ДЕКОРАТИВНЫЕ РАСТЕНИЯ, в том числе КОМНАТНЫЕ (против комплекса гнилостных почвенных инфекций);
  • ГАЗОН;
  • ХВОЙНЫЕ РАСТЕНИЯ;
  • РАССАДА — любая: капусты, цветов, земляники, баклажанов, перца, помидоров и др. (от «чёрной ножки»).

Компостные кучи, заселённые Триходермой вериде, перепревают быстрее (этой информации нет в краткой инструкции к препарату, но она подтверждена многочисленными научно-практическими исследованиями).

Способы применения Триходермы вериде

Задача препарата — предотвратить или минимизировать болезни, поэтому его используют ДО их появления. Заболевшим растениям он не поможет, зато способен оздоровить землю после них.

Содержимое пакета разводим чуть тёплой водой (не хлорированной, без химикатов, желательно мягкой — талой, дождевой, из природных водоёмов) и даём настояться полчаса — час (в тенистом месте, не на свету). Полностью порошок не растворяется, плавает в виде взвешенных частиц.

Сроки и дозы внесения:

  1. Семена, клубни, луковицы (перед посевом, посадкой) выдерживаем 1 час в растворе: 1 г порошка на 3 л воды. Замачивание допустимо заменить опудриванием или опрыскиванием посадочного материала.
  2. Растения поливаем под корень 2 — 3 раза: при отрастании пары-тройки настоящих листочков, при пересадке рассады на постоянное место, затем спустя 2 недели. Литр жидкости распределяем на 5 — 10 лунок (либо горшочков) или на 2 кв. м. Концентрация препарата — по инструкции (от 30 до 50 г/10 л воды).
  3. Весной и осенью пробрызгиваем (распределяя ведро раствора на 10 кв. м.) компостные кучи и землю — парники, теплицы, уличные гряды, приствольные круги, клумбы, газон (30 г порошка на 10 л воды). Можно пролить и рассадные грунты перед посевом.
  4. По ходу сезона удобряем участок компостом, заранее обогащённым полезными грибками.

Внесённые микроорганизмы хорошо работают в рыхлом, умеренно увлажнённом грунте, сдобренном органикой и минеральными удобрениями. Активность снижается на щелочных землях, а также после применения химических фунгицидов и термообработок (прожаривание грунта, пролив кипятком и т. п.).

Меры предосторожности

Инструкция напоминает, что препарат может нарушить экологическое равновесие водоёмов. Вблизи от них применение должно быть осторожным. Других опасностей нет.

Аналоги препарата Триходерма

Биофунгицид с торговым наименованием «Триходерма вериде» фасует агрофирма «Ваше хозяйство» (с регистрацией в Госреестре). Розничная расфасовка — 15 г и 30 г, инструкция прилагается.

Аналогичные и родственные грибки (Триходерма) представлены в таких препаратах, как Трихофлор, Триходермин, Глиокладин, Трихоцин. Близкие по принципу действия (микроорганизмы другого рода, чуть менее ативные в земле) — Бактофит, Алирин, Гамаир, Ризоплан, Планриз, Фитоспорин, а также Байкал и Сияние.

В биофунгициде Споробактерин — (от компании «Ортон») совмещены почвенные грибки Триходерма и бактерии, подавляющие болезни надземных органов растения.

Что делать, если у подростка появилась аллергия на собственный пот

Существует много видов аллергических реакций, какие-то встречаются чаще, например, поллиноз, какие-то реже, например, аллергия на яблоки. Елена Борисовна Черкасова, педиатр сети клиник «Витбиомед+», врач высшей категории, рассказала «Летидору» еще об одной разновидности аллергии, которая может беспокоить подростков — об аллергической реакции на пот.

Как проявляется аллергия на пот

Аллергия на пот — не самый известный вид аллергии, но страдают ей, по некоторым данным, около 10% молодых людей. Аллергия на пот встречается у людей любого возраста, у подростков в том числе.

Пот может вызывать обострения атопического дерматита и провоцировать холинергическую крапивницу — именно ее мы имеем в виду, говоря об аллергии на пот. Если у подростка при повышении температуры воздуха, после физической нагрузки, после стрессовых ситуаций, то есть ситуаций, вызывающих потение, развиваются симптомы холинергической крапивницы, то, скорее всего, это проявления аллергии на пот.

Симптомы аллергии на пот

Холинергическая крапивница развивается остро, то есть симптомы появляются в течение 10–60 минут после триггера (в нашем случае потения). У подростка возникают зудящие красные небольшие волдыри с серозным содержимым, может быть ощущение ожога крапивой (отсюда и название), еще эта сыпь болезненна.

Причины аллергии на пот

В исследовании 2020 года, которое было опубликовано в журнале Current Problеms of Dermatology, ученые выяснили, что главным антигеном, вызывающим выброс гистамина и, следовательно, проявление аллергии при потении, является белок, вырабатываемый грибом Malassezia globosа.

Этот дрожжевой грибок живет на коже многих животных и людей и обычно не вызывает проблем. Но он же может стать причиной оппортунистических инфекций, то есть заболеваний, которые вызваны условно-патогенными вирусами или клеточными организмами (бактерии, грибы, простейшие), но при этом они не приводят к болезни здоровых людей, а развиваются только при сниженном иммунитете. Например, повышенное количество этого же грибка наблюдают при перхоти.

Выброс гистамина вызывает воспаление и стимулирует выброс ацетилхолина (нейромедиатор, который отвечает за высшие функции мозга). Последний выделяется в ответ на физическую нагрузку, стресс, прием горячей ванны, то есть в ситуациях, когда люди тоже, как правило, потеют, и вызывает иммунный ответ, проявляющийся сыпью.

Штамм микроскопического гриба trichoderma viride bocg 63/300 — продуцент целлюлаз и гемицеллюлаз

Изобретение относится к биотехнологии, касается производства ферментов и представляет собой новый штамм Trichoderma viride BOCG 63/300 — продуцент целлюлаз и гемицеллюлаз. Штамм Т. viride BOCG 63/300 получен в результате ступенчатой мутагенной обработки штамма Т. viride 44-11-62/3. При определенных условиях ферментации продуцирует оригинальный комплекс целлюлаз и гемицеллюлаз, обеспечивающих его высокую продуктивность при использовании в различных отраслях народного хозяйства с целью гидролиза некрахмальных полисахаридов растительного сырья.

Изобретение относится к биотехнологии, используется в микробиологической промышленности для производства ферментов и представляет собой новый штамм Trichoderma viride BOCG 63/300 — продуцент внеклеточных целлюлаз и гемицеллюлаз.

Ферментный препарат, получаемый на основе штамма, может быть использован в сельскохозяйственном производстве, пищевой, текстильной, целлюлозно-бумажной промышленности с целью гидролиза некрахмальных полисахаридов растительного сырья. В его состав входят высокоактивные ферменты цитолитического комплекса целлюлазы и гемицеллюлазы ( -глюканазы, ксиланазы), катализирующие гидролиз целлюлозы и гемицеллюлозы до низкомолекулярных углеводов — глюкозы, целлобиозы, маннозы, галактозы, арабинозы, ксилозы.

Штамм Trichoderma viride ВОCG 63/300 получен в результате ступенчатой мутагенной обработки конидий исходного штамма Trichoderma viride 44-11/62/3 (F-374).

Отличительной особенностью нового штамма является то, что он при определенных условиях культивирования синтезирует оригинальный комплекс ферментов эндо-1,4- -глюканаз, экзо-1,4- -глюканаз, целлобиаз, ксиланаз, обеспечивающих высокую эффективность ферментного препарата, получаемого на его основе, при использовании в различных отраслях народного хозяйства.

Предлагаемый штамм Trichoderma viride BOCG 63/300 отличается от известных продуцентов высоким уровнем биосинтеза целлюлаз и гемицеллюлаз. Штамм быстрорастущий в глубинных условиях на питательной среде, содержащей пшеничные отруби и бумажную пыль; на 96 часу роста достигается активность целлюлазы по фильтровальной бумаге (АФБ) 100-105 ед/мл, активность -глюканазы — 110 ед/мл, активность ксиланазы — 450-500 ед/мл.

Известны продуценты целлюлаз Trichoderma viride 44 (Авт. свид. 745933, 1978 г. ), Trichoderma viride 13/10 (авт. св. 923188, 1984 г.), которые используются в производстве целлюлаз при культивировании на питательных средах, содержащих свекловичный жом и минеральные соли.

Однако эти штаммы характеризуются относительно низким уровнем биосинтеза целлюлаз и ксиланаз, а также отсутствием биосинтеза глюканаз при культивировании в глубинных условиях.

В патенте 2020534, 1994 г. описан способ получения комплекса целлюлозолитических ферментов, предназначенных для обработки растительного сырья, предусматривающий совместное глубинное выращивание штаммов-продуцентов Trichoderma viride 44 и Aspergillus foetidus M-45.

В патенте РФ 2001949 описан штамм Trichoderma reesi ВСМ 18.2/КК — продуцент целлюлаз, пригодный для культивирования в присутствии высоких концентраций сахаров, в том числе на молочной сыворотке. Уровень активности целлюлазы этого штамма достигает 3,5-4,2 ед/мл через 110 часов культивирования на среде следующего состава: 40 г/л — свекловичный жом; 14 г/л — солодовые ростки; 6 г/л — аммоний сернокислый; 2 г/л — калий фосфорнокислый однозамещенный; 0,6 г/л — магний сернокислый; вода водопроводная; pH 5,4.

На питательной среде, включающей 20,0 г молочного сахара, 4,0 г микрокристаллической целлюлозы и минеральные соли, уровень активности целлюлазы при культивировании вышеназванного штамма в ферментере объемом 200 л составил 18,2 ед/мл в условиях дробного добавления лактозы.

Наиболее близким аналогом к заявленному штамму является Trichoderma viride 44-11-62/3 (Патент 1525208, 1989 г.) — продуцент целлюлазы и ксиланазы, синтезирующий ферменты на питательной среде, содержащей: 3,0 г/л — свекловичный жом; 1,43 г/л — солодовые отростки;
0,4 г/л — аммоний сернокислый;
0,2 г/л — калий фосфорнокислый однозамещенный;
0,4 г/л — натрий азотнокислый;
0,03 г/л — магний сернокислый;
5,0 г/л — картофельная бapда;
вода водопроводная;
pH 5,4.

Продолжительность культивирования этого продуцента на круговой качалке составляет 168 ч. Активность целлюлазы в этих условиях составляет 24 ед/мл, ксиланазы — 21 ед/мл культуральной жидкости.

Существенным недостатком штамма является низкий уровень ферментов и сравнительно большая продолжительность культивирования.

Целью изобретения является получение высокоактивного штамма — продуцента целлюлаз и гемицеллюлаз Trichoderma viride BOCG 63/300, обладающего высокой биосинтезирующей активностью при культивировании его на ферментационных средах с целлюлозой и пшеничными отрубями.

Штамм Trichoderma viride ВОCG63/300 получен в результате ступенчатой мутагенной обработки исходного штамма Trichoderma viride 44-11-62/3 с использованием УФ-лучей и этиленимина с последующим отбором моноколоний по признаку ферментообразования.

Для определения активности ферментов культуральную жидкость центрифугировали при 3000 об/мин в течение 20 мин и использовали супернатант.

Активность целлюлазы характеризовали по гидролизу фильтровальной бумаги с определением образующихся сахаров по методу Шомоди-Нельсона.

За единицу целлюлолитической активности принята способность ферментов образовывать 1 мг восстанавливающих сахаров (в пересчете на глюкозу) при действии на целлюлозу фильтровальной (хроматографической) бумаги при температуре 50 o С и рН 4,7 в течение часа.

Метод определения экзо- -глюканазной активности основан на определении восстанавливающих сахаров, образующихся при действии фермента на 1,3/1,4 -глюкан.

За единицу экзо- -глюканазной активности принято такое количество фермента, которое в стандартных условиях (температура 50 o С, рН 5,0) гидролизует -глюкан со скоростью, соответствующей образованию восстанавливающих групп, эквивалентных 1 микромолю глюкозы в минуту.

Метод определения ксиланазной активности основан на определении восстанавливающих сахаров, образующихся при действии фермента ксиланазы на ксилан.

За единицу ксиланазной активности (КсА) принимают такое количество фермента, которое в стандартных условиях (температура 50 o С, рН 5,0) гидролизует ксилан со скоростью, соответствующей образованию восстанавливающих групп, эквивалентных 1 микромолю глюкозы в минуту.

Культурально-морфологические признаки
Культура хорошо развивается на 6%-ном сусло-агаре, на картофельно-декстрозном агаре, на модифицированном агаре Чапека-Докса с добавлением кукурузного экстракта, на агаре Роулен-Тома.

На сусло-агаре на пятые сутки роста при температуре 30 o С — колонии белые, плоские, округлые (диаметр колоний 5,0-5,5 см) с неровными краями.

Мицелий бесцветный, ползучий, быстро растущий. Дернинки с конидиеносцами, желтовато-оливкового цвета. Конидиеносцы разветвленные с мутовчатыми ответвлениями. Конидии овальные, размером (2,8-3,5)-(5,0-9,5) мкм, в массе желтовато-зеленые. В среду выделяется желтый пигмент.

На картофельно-декстрозном агаре наблюдается быстрый рост колоний, на пятые сутки роста диаметр колоний достигает 7-8 см. Колонии концентрические, подложка белая, конидии окрашены в желто-зеленый цвет. Среда пигментированная, желтая.

На среде Чапека-Докса с добавлением кукурузного экстракта на пятые сутки роста в термостате при 30 o С диаметр колоний 3,0-3,5 см, колонии округлые, светлые, складчатость отсутствует, спороношение слабое, конидии оливковые в центральной части колонии.

На среде Роулен-Тома колонии быстрорастущие, концентрические, выпуклые, пушистые, края волнистые, мицелий белый. Спороношение обильное по всей колонии. Конидии желто-зеленого цвета. В среду выделяется желтый пигмент.

При культивировании штамма Trichoderma viride BOCG 63/300 в глубинных условиях на ферментационной питательной среде к 12 часам роста конидии прорастают, начинают ветвиться и образуют боковые побеги. К 24 часам роста разрастаются многочисленные колонии с гомогенной базофильной цитоплазмой. После 36-48 часов роста протоплазма гиф претерпевает изменения. Гифы интенсивно растут в длину, утончаются и образуют густое сплетение мицелия. Протоплазма гомогенна, базофилия ее длительно сохраняется. Весь дальнейший рост мицелия сопровождается увеличением массы гиф. К 60-72 часам роста базофилия протоплазмы снижается, отдельные гифы переходят в состояние автолиза, общая способность гиф окрашиваться метиленовым синим резко снижается.

Активность целлюлазы, ксиланазы и -глюканазы в этот период значительно возрастает и достигает максимума к 96-110 часам.

Физиолого-биохимические признаки
Штамм хорошо усваивает глюкозу, фруктозу, сахарозу, мальтозу, крахмал, маннит. Желатину разжижает, молоко не коагулирует.

Усваивает аммонийную и нитратную форму азота. Усваивает разнообразные фосфорные соединения, более предпочтителен однозамещенный фосфорнокислый калий.

Культура — строгий аэроб. Оптимальная температура для роста и биосинтеза целлюлаз и гемицеллюлаз (30 2) o C. Оптимaльный рН питательных сред для роста и биосинтеза ферментов 5,0-5,5.

Примеры использования штамма Trichoderma viride BOCG 63/300
Пример 1. Штамм Trichoderma viride BOCG 63/300 выращивают в пробирках на скошенном сусло-агаре в течение 5 суток при температуре 30 o С и 10 суток выдерживают при комнатной температуре. Суспензией спор инокулируют питательную среду следующего состава, %:
— жом свекловичный — 3,0;
— аммоний сернокислый — 0,7;
— солодовые ростки — 1,4;
— дрожжи кормовые — 0,15;
— калий фосфорнокислый однозамещенный — 0,2;
— магний сернокислый — 0,03;
— вода водопроводная — до 100;
— рН до стерилизации — 5,0.

Культивирование осуществляют в качалочных колбах на 50 мл питательной среды в течение 120-130 часов на круговой качалке при 220 об/мин и температуре 29 o С. Активность целлюлазы — 63 ед/мл культуральной жидкости, ксиланазы — 300 ед/мл, -глюканазы — 100 ед/мл.

Пример 2. Для получения инокулята используется питательная среда следующего состава, %:
— аммоний сернокислый — 0,4;
— отруби пшеничные — 1,0;
— калий фосфорнокислый однозамещенный — 0,2;
— лактоза — 0,5;
— вода водопроводная — до 100;
— pН 5,0.

Засев посевной среды осуществляют суспензией спор культуры, выращенной на сусло-агаре. Инокулят выращивают в качалочных колбах емкостью 0,75 л при температуре 30 o С в течение 18-24 часов. Полученным инокулятом засевают ферментационную среду следующего состава, %:
— отруби пшеничные — 2,0;
— целлюлоза — 0,7;
— кукурузный экстракт — 1,0;
— дрожжи кормовые — 0,5;
— аммоний сернокислый — 0,8;
— калий фосфорнокислый однозамещенный — 0,2;
— вода водопроводная — до 100;
— pН 5,0;
— объем питательной среды в колбе — 50 мл.

— количество инокулята — 5 мл.

Ферментацию штамма Trichoderma viride BOCG 63/300 проводят в колбах емкостью 0,75 мл на круговой качалке при 210 об/мин и температуре 29 o С. Продолжительность процесса 100-110 часов. Активность целлюлазы 60-65 ед/мл, ксиланазы 300-350 ед/мл, -глюканазы 80 ед/мл.

Пример 3. Культивирование осуществляют на той же питательной среде, что и в примере 2, но целлюлозу вводят в питательную среду на вторые сутки в качестве подпитки для индукции биосинтеза целлюлазы.

Процесс ферментации проводят в ферментере емкостью 0,5 м 3 с коэффициентом заполнения 0,5 при температуре 30 2 o С, расход воздуха поддерживают на уровне 0,8 м 3 /м 3 среды в минуту, перемешивание непрерывное при работе мешалки 180 об/мин.

Стерильный раствор целлюлозы добавляют на 22-26 часы роста культуры.

Используемая среда обладает улучшенными реологическими свойствами по сравнению с питательными средами, содержащими свекловичный жом, что позволяет интенсифицировать процессы роста продуцента за счет улучшения массообменных процессов.

Уровень активности целлюлазы на 110 ч ферментации составляет 100-105 ед/мл, ксиланазы — 450-500 ед/мл, -глюканазы — 100-110 ед/мл.

Предлагаемый штамм Trichoderma viride BOCG 63/300 имеет следующие преимущества по сравнению с прототипом:
— более высокую целлюлазную активность;
— наличие в ферментном комплексе ксиланазы и -глюканазы;
— низкую продолжительность роста культуры.

Указанные преимущества дадут возможность использовать заявленный штамм в производстве ферментных препаратов целлюлазного и гемицеллюлазного действия.

Штамм гриба Trichoderma viride BOCG 63/300 — продуцент целлюлаз и гемицеллюлаз.

Ф. К. Алимова Промышленное применение грибов рода Trichoderma

Название Ф. К. Алимова Промышленное применение грибов рода Trichoderma
страница 13/25
Дата 31.07.2013
Размер 4.09 Mb.
Тип Монография
источник
1. /Биотехнология.doc Ф. К. Алимова Промышленное применение грибов рода Trichoderma

3.3. Влияние грибов рода Trichoderma на человека

Все чаще виды Trichoderma признаются патогенными в иммунологической супрессии хозяина (Miguela, 2005). Среди сапрофитных видов рода Trichoderma некоторые изоляты вызывают у людей аллергические заболевания верхних дыхательных путей, например T. viride. Некоторые представители Trichoderma, особенно T. viride, T. koningii, T. longibrachiatum являются возбудителями перитонита (Kuhls et al. 1999). Они участвуют в продолжительном амбулаторном перитоническом диализе, ассоциированном с перитонитами и инфекциями иммуновосприимчивых пациентов с гематологической злокачественной опухолью или при трансплантации органов. T. longibrachiatum является основным участником этих инфекционных процессов. Есть данные о несмертельной легочной инфекции, вызванной T. viride у пациента с лейкемией. Этот штамм выделен из организма 54-летней пациентки, перенесшей химиотерапию острой миелоидной лейкемии. Минимальные ингибирующие концентрации для организма были следующие: амфотерицин (0.25 Ag/mL) и вориконазол (2 Ag/mL). Наибольшую опасность плесневые грибы, к которым относятся и грибы рода Trichoderma, представляют в городской черте. Современные города – особые экосистемы, отличающиеся по физико-химическим свойствам почв и атмосферы, структуре сообществ животных, растений, микроорганизмов, наличию большого числа сооружений из созданных человеком материалов, высокому уровню загрязнения внешней среды от зональных биогеоценозов. В городах, как правило, создаются более теплые климатические условия, атмосферный воздух в большей степени насыщен окисями углерода и азота. Для формирования микобиоты большую роль играет наличие различных элементов инфраструктуры – дорожных покрытий, поверхностей зданий из разных материалов и т.д., на которых может происходить развитие грибов (Марфенина и др., 2002).

С давних времен постулировалось, что наличие влажности и плесени в доме и на работе оказывает вредное воздействие на здоровье (цит. по Митрофанов, Козлова, 2004). Установлено, что у лиц, проживающих в сырых, заплесневелых зданиях, значительно больше жалоб на здоровье. Проблемы со здоровьем обнаружены у более чем 6000 детей в шести штатах США. При этом сырость в доме являлась значимым фактором риска для респираторных и других заболеваний в этой возрастной группе. Список симптомов обычно включал жалобы со стороны верхних дыхательных путей, а также головную боль, раздражение глаз, носовые кровотечения, заложенность носа, кашель, простудные симптомы и иногда жалобы со стороны желудочно-кишечного тракта. Однако причинные отношения между влажностью в помещении и заболеваниями до сих пор остаются не вполне ясными. Установление причин такой взаимосвязи осложняется чрезвычайным разнообразием загрязняющих химических веществ, присутствующих в воздухе помещений. Кроме того, окружающая среда внутри помещений содержит самые разнообразные микроорганизмы, а также продукты их метаболизма, включая эндотоксины и микотоксины. Часто бактериальная нагрузка может быть намного большей, чем грибковая.

Известно, что большинство грибов могут выживать в очень широком температурном диапазоне, однако для оптимального роста им необходима высокая абсолютная и относительная влажность (Kildesø et al., 2003). Впрочем, повышение температуры и наличие пригодного для питания субстрата могут способствовать выживанию грибов и при более низкой влажности. Наличие загрязнений, восприимчивой окраски или бумажных обоев не так необходимо для роста плесневых грибов, как влажность. Следует помнить, что, наряду с влиянием на рост грибов, влажность сама по себе может быть критическим фактором для формирования так называемого, так как она влияет на развитие пылевых клещей и уровень озона. В Дании проведена идентификация изолятов Trichoderma, выделенных из зданий, разрушенных просочившейся водой, с помощью ITS1-риботипирования и PCR. Выделенные изоляты проявили высокую гомологию штаммам T. atroviride, T. citrinoviride, T. harzianum, T. longibrachiatum, T. viride (Lubeck et al., 2000). Другие авторы для идентификации использовали методы: ВЭЖХ экстрактов культур, морфологическую идентификацию и последовательности rDNA (Thrane et al., 2001).

Список наиболее часто выделяемых в помещениях плесневых грибов представлен в таблице 3.1.

Т а б л и ц а 3.1

Основные плесневые грибы внутри помещений

Род Источники
Alternaria

Растения, яблоки, капуста, сыры, цитрусовые, фрукты, злаки, свинина, картофель, томаты
Aspergillus

Почва, гниющие растения и овощи, ткани, кожа, текстиль, сыры, консервированное мясо
Basidiomyces Сухая гниль, древесная гниль
Cladosporium

Мертвые растения, старые оконные рамы, почва, текстиль, кожа, сыры, злаки
Fusarium

Почва, бекон, бобы, кукуруза, морковь, сыры, капуста, лук, картофель, томаты
Penicillium

Почва, компост, гниющие овощи, винные погреба, кожа, ткани, бумага, фрукты
Stachybotrys

Почва, гниющие растения, целлюлоза, сено, солома
Trichoderma

Почва, гниющая древесина. Злаки, фрукты, томаты, сладкий картофель, бумага, текстиль.
Trichophyton Почва, кожные чешуйки, ногти

Частота выделения грибов в сырых зданиях

Проведенными в Северной Америке перекрестными опросными исследованиями выявлено, что от 27 до 36% домов имеют проблемы с плесенью. Проведенные исследования качества воздуха внутри помещений в самых разных странах представили еще более высокие цифры − от 42 до 56%. В Европе наличие сырости и грибов в домах было обнаружено: в Великобритании − от 17 до 46% домов, в Нидерландах − от 15 до 18% и в Финляндии − в 15% наблюдений. Тревожит тот факт, что признаки наличия плесени или первичные, связанные с сыростью, дефекты обнаружены в 80% выбранных случайным образом домах. Установлено, что в деревянных домах было значительно больше грибов, чем в бетонных. Классифицируя типы грибов из домашней пыли домов, где проживали больные бронхиальной астмой, авторы установили, что вне зависимости от конструкции жилища, наиболее высоким был уровень осмотических грибов (группа А) и грибов, которые выживают в относительно сухих условиях (группа В). Грибы, которые нуждаются в очень высокой влажности (группа D), присутствовали в малых количествах.

Группа A: осмотические или ксерофильные грибы, преимущественно Aspergillus restrictus, Eurotium и Wallemia.

Группа В: грибы, выживающие длительное время в относительно сухих условиях, преимущественно Aspergillus (исключая A. restrictus) и Penicillium.

Группа С: грибы, выживающие в относительно влажных условиях и чувствительные к недостатку влаги. В эту группу входят многие грибы: Acremonium, Alternaria, Arthrinium, Aureobasidium, Cladosporium, Fusarium, Phoma и др.

Группа В: грибы, выживающие только в очень влажных условиях и очень чувствительные к «сухости»: Absidia, Mucor, Rhizopus, Trichoderma и дрожжи.

Оценка экспозиции и технические проблемы в определении содержания грибов в помещениях

Хотя исследования и обеспечивают объективную информацию о микроорганизмах внутри помещений, имеются существенные проблемы, связанные, прежде всего, с методикой забора материала. Самый традиционный метод (выставленные чашки с агаром – метод седиментации по Коху) не обеспечивает адекватные расчеты количества оседаемых микробов из воздуха. Для этого необходимо использование специальных устройств типа пробоотборника Андерсена или аппарата Кротова. Для определения количества спор в воздухе также применяют ловушки Булкарда, где воздух проходит через устройство со скоростью 10 литров в минуту, и частицы оседают на ленте барабана с записью в течение 7 суток. Эти ловушки определяют число спор в кубическом метре воздуха за определенный период времени и могут быть использованы как внутри помещений, так и снаружи. После того, как споры собраны, проводят их микроскопирование. Однако многие споры практически невозможно различить по их морфологии.

Даже используя устройства количественного учета, между практически идентично полученными пробами возможны огромные различия (до 1000 раз). Таким образом, исследование единичных проб воздуха представляется недостаточно достоверным. Кроме того, исследование необходимо проводить без применения «агрессивных» методов забора материала в помещении (например, с использованием пылесоса), когда можно получить более высокие количественные показатели, чем это имеет место фактически. Обнаружено, что механическое воздействие непосредственно на места роста и чистка ковров пылесосом (методы, часто использованные в обзорах) вызывают значительное временное увеличения числа спор в воздухе. Наконец, важную роль при попытке количественного определения некоторых видов грибов может играть размер самих клеток.

Впрочем, существует мнение, что вообще нет необходимости проводить микологическое исследование помещения, если имеется видимый рост грибов, поскольку в любом случае необходимо их удаление (чистка, устранение загрязненного материала) и контроль над влажностью воздуха.

Воздействие на здоровье людей, проживающих в сырых помещениях, оказывают не только споры/клетки грибов, но и клеточные фрагменты, которым до сих пор уделяли мало внимания. Доказано, что мелкие частички (менее 2,5 мкм) четко обусловливают побочные эффекты на здоровье людей. Установлено, что значительное количество иммунологически активных частиц имеют размеры существенно меньшие, чем споры, выделяющиеся с поверхностей, загрязненных грибами. Очень маленькие частички (0,3 мкм) количественно превышали число спор более чем в 320 раз. Проблема распознавания таких частиц состоит в том, что мелкие и очень мелкие клеточные фрагменты невозможно обнаружить традиционными методами исследовании образцов биоаэрозолей.

Грибы в помещениях и заболевания человека

Грибы в целом, и плесени, в частности, могут вызывать заболевания человека тремя путями:

1. Прямая инфекция. Плесневые грибы вызывают эти виды заболеваний очень редко и преимущественно у больных с серьезными иммунодефицитными состояниями.

2. Грибы могут вызывать аллергические реакции, которые обычно обусловлены вдыханием или попаданием на слизистые оболочки частиц плесневых грибов. Аллергию могут вызывать как живые, так и мертвые грибы.

3. Грибы могут продуцировать токсины, которые вызывают болезненные реакции у людей и животных. Основным путем поступления их в организм является желудочно-кишечный тракт – с загрязненной токсигенными грибами пищей. Некоторые микотоксины являются очень сильными ядами (Halt, 1998; Thrane et al., 2006).

Большинство исследований, в которых описано влияние на здоровье человека влажности и плесени внутри помещений, базируется на субъективных и ретроспективных (анкетных) опросах. Лишь немногие исследования включали результаты физического обследования или диагностических тестов. В таком подходе заключены очевидные потенциальные проблемы.

Для контроля количества клеток возбудителя аллергии Trichoderma longibrachiatum TW-1 − продуцента β-глюканазы в воздухе рабочей зоны сотрудниками ВНЦ БАВ (Россия) разработана специальная методика, позволяющая количественный анализ в диапазоне концентраций от 100 до 6000 клеток в 1 м 3 воздуха (Метод микробиологического измерения концентрации…, 2002).

Диагностика микогенной аллергии

Диагностика любых аллергических заболеваний основана на клинических симптомах, кожных пробах и тестах in vitro с использованием радиоаллергосорбент-теста (РАСТ) или иммуноферментного анализа (ИФА), реже − на провокационных тестах. Кожные пробы – самый простой метод определения IgE к специфическим аллергенам. Обычно используют два метода для диагностики к аллергенам грибов – это прик-тест (укольный) и внутрикожные пробы. Прик-тест лучше коррелирует с анамнезом, методами определения специфических IgE in vitro и провокационными ингаляционными тестами. К тому же внутрикожные пробы дают большее количество ложноположительных результатов, чем прик-тест.

Разнообразие потенциальных аллергенных грибов существенно больше, чем перечень их в имеющихся диагностических аллергопанелях и реагентах для кожных тестов. В связи с этим особое значение придают исследованию проб воздуха, что позволяет, если известны найденные в воздухе виды грибов, сузить спектр используемых тестов.

Аллергические реакции от воздействия плесневых грибов на легочную ткань хорошо описаны в очень широком диапазоне: от воспаления верхних дыхательных путей (риниты) с сопутствующим конъюнктивитом до тяжелой бронхиальной астмы, аллергического бронхолегочного аспергиллеза и экзогенного аллергического альвеолита (ЭАА).

Микотоксины и их влияние на здоровье человека

Клинические токсикологические синдромы, связанные с попаданием с пищей больших количеств микотоксинов, хорошо описаны у животных в широком диапазоне: от внезапной смерти до замедления роста и снижения репродуктивной функции. Эффекты, оказываемые на людей, значительно менее хорошо определены (таблица 3.2).

Т а б л и ц а 3.2

Заболевания человека и животных, связанные с микотоксинами

Токсины Виды грибов Заболевания
Высоковероятные и четко установленные причинные агенты
Алкалоид Claviceps purpurea

Эрготизм (гангренозный и конвульсивный)
Аматоксин Amanita spp. Отравление ядовитыми грибами
Афлатоксин Aspergillus flavus, Aspergillus parasiticus Афлотоксикоз, гепатит, рак, детский цирроз
Вомитоксин, деоксиниваленол F. graminearum Анорексия
Зеараленон Fusarium spp. Преждевременное телархе 1
Охратоксин Aspergillus ochraceus, Penicillium Viridicatum Балканская эндемичная нефропатия, опухоль мочеточника
Стеригматоцистин Aspergillus versicolar Рак
Трихотецены (Т-2 токсин, ДАС) Fusarium, Myrothecium, Trichoderma, Cephalosporium spp. Алиментарная токсическая алейкия, стахиботритоксикоз и др.
Эрговалин Acremonium coenophialum Отравление овсянницей
Возможные причинные агенты
Метаболиты Fusarium equiseti Болезнь Кашина-Бека 2
Метаболиты Fusarium graminearum Болезнь «красной плесени» (Akakabi-byo) 3
Метаболиты Phoma sorghina Болезнь Оньялай (Onyalai) 4
3-нитропропионовая кислота Arthrinium spp. Детский нейротоксикоз
Фумонизин Fusarium moniliforme Рак пищевода
Патулин Penicillium expansum Опухоли
Пенитрем Aspergillus spp., Penicillium spp. Тремор

Рубратоксин Penicillium rubrum Гепатотоксичность
Секалоновая кислота D Penicillium oxalicum Тератогенный эффект
Циклопиазоновая кислота Aspergillus spp., Penicillium spp. Отравления Кодуа (Kodua) 5
Цитринин Penicillium citrinin Нефротоксичность
Маловероятные или ошибочно установленные причинные агенты
Афлатоксин Aspergillus spp. Синдром Рейе 6 , квашиоркор
Глиотоксин Aspergillus, Trichoderma spp. СПИД
Зеараленон

Т-2 токсин

Fusarium spp.

Fusarium spp.

Цервикальный рак

Пеллагра

Циклоспорин Various species СПИД
Цитреовиридин Penicillium spp. Кардиальная бери-бери

Примечание:

1 Телархе – раннее преждевременное развитие молочных желез.

2 Болезнь Кашина-Бека – дегенеративная артропатия, которую связывают с употреблением воды с высоким содержанием железа.

3 Болезнь «красной плесени» (Akakabi-byo) – заболевание, встречающееся только в Японии, которое связывают с употреблением в пищу пораженного плесенью риса и других зерновых культур. Симптомы включают анорексию, тошноту, рвоту, головную боль, боли в животе, понос и судороги.

4 Болезнь Onyalai (приобретенная тромбоцитопеническая пурпура) – часто фатальное заболевание, описанное в тропической Африке, сопровождающееся тромбоцитопенией и кровоточащими язвами во рту и в глотке. Считается, что причиной является отравление лекарствами, которые назначают колдуны.

5 Отравления Кодуа – описанные в Индии отравления загрязненным семенем проса.

6 Синдром Рейе (Reye’s) – редкое заболевание, возникающее в детском возрасте. Оно характеризуется развитием у ребенка энцефалита в сочетании с недостаточностью функции печени. Часто такие симптомы появляются на стадии выздоровления ребенка от какой-либо перенесенной ранее вирусной инфекции. Причина развития данного заболевания неизвестна, однако считается, что одним из виновников его возникновения является аспирин; поэтому данное лекарство не рекомендуется назначать детям в возрасте до 12 лет, если в этом нет особой необходимости.

Из таблицы 3.2 видно, что микотоксины оказывают свое основное токсическое действие при попадании внутрь с загрязненной пищей (Blumenthal, 2004; Thrane et al., 2006). Здесь также отметим следующие положения: во-первых, грибы, загрязняющие продукты, с большой натяжкой можно назвать грибами помещений; во-вторых, если не касаться пищевых отравлений по своей сути, интересен следующий вопрос: может ли человек получить расстройство здоровья, вдыхая микотоксины в виде аэрозолей в реальных условиях жилого помещения? Ингаляционные воздействия больших доз микотоксинов практически связаны исключительно с профессиональными факторами. Связь микотоксикозов с заболеваниями, обусловленными воздействием на здоровье факторов внутренней среды помещений, в настоящее время не доказана.

Показано, что обработка зерновых биологически эффективными биопестицидами, изготовленными на основе грибов рода Trichoderma, снижают пораженность пищевой продукции микотоксинами и вытеснение токсинообразующих видов Trichoderma и способствуют получению экологически чистой пищевой продукции.

3.3.1. Использование грибов рода Trichoderma в медицине

В медицине энзимы и гены грибов рода Trichoderma могут быть особенно полезны, так как они имеют сильную фунгицидную активность и высокий уровень синергизма с широко применяемыми противогрибковыми лекарствами, о чем не сообщалось для других хитинолитических ферментов. Ферменты могут быть также использованы для получения детергентов и протопластов и, по причине их фунгицидной активности могут использоваться как стерилизующие растворы.

Показано, что T. polysporum (Link ex Pers.) Rifai продуцирует липофильный циклоспорин А. Он обладает различными биологическими и физиологическими действиями: антипаразитическим, фунгицидным, противовоспалительным и иммуносупрессивным свойствами. Циклоспорин А используется в качестве иммуносупрессора после трансплантации органов и при лечении некоторых аутоиммунных нарушений, таких, как псориаз, атопический дерматит, болезнь Бесета. В качестве побочного эффекта наблюдается стимуляция процессов оволосения (hirsutism) (Takahashi, Kamimura, 2001).

С получением NAG, ферменты стали использоваться в качестве пищевой добавки, ростового субстрата и лекарства для лечения желудочно-кишечных дисфункций у людей и животных.

При использовании в интегрированной защите растений должны потребоваться значительно более низкие дозы, чем при химическом типе защиты с применением фунгицидов, а также уменьшить риск появления устойчивых штаммов фитопатогенных микроорганизмов при длительном применении в агроценозах, что позволит получить экологически чистую пищевую продукцию.

Введение

В условиях высокой специализации и концентрации сельскохозяйственного производства проведение защитных мероприятий — неотъемлемый фактор получения высоких и гарантированных урожаев сельскохозяйственных культур, сохранения их качества.

Высокая эффективность и универсальность химического метода защиты растений, быстрая окупаемость сделали его доминирующим в системе защитных мероприятий. Однако, широкое и повсеместное применение химических средств защиты растений приводит к появлению новых устойчивых форм вредных организмов, это в свою очередь, влечет за собой необходимость увеличения норм расхода препаратов и их ассортимента. Загрязняются почва, воздух, вода, возрастают остаточные количества химических препаратов и продуктов их распада в сельскохозяйственной продукции, наносится ущерб окружающей среде и здоровью человека.

Биологический метод борьбы основан на использовании естественных врагов вредителей, регулирующих численность последних в природе. При этом в очагах заражения вредителями создается искусственным путем высокая концентрация их врагов, что приводит к ликвидации этих очагов. В условиях загрязненной окружающей среды биологические методы борьбы с вредителями позволяют сократить или отказаться от применения химических средств — пестицидов и гербицидов.

В биометоде используются различные микроорганизмы, оказывающие положительное влияние на развитие растений, при этом угнетающие возбудителей фитозаболеваний. Огромный интерес ученых проявляется к почвенным грибам. В связи с вышесказанным целью работы явился анализ литературы о грибах рода Trichoderma, их характеристике и об их использовании в растениеводстве.

Характеристика грибов рода Trichoderma

Важная роль в подавлении развития фитопатогенов отводится грибам-антагонистам. Среди их представителей внимание исследователей привлекают грибы рода Trichoderma (порядок Hyphomycetales). К роду Trichoderma относятся следующие виды грибов: T. lignorum, T. harzianum, T. viride, T. koningii, T. reesei, T. pilulifermum, T. polysporum, T. hamatum, T. aureoviride, T. longibrachiatum, T. pseudokoningii [1].

У грибов рода Trichoderma мицелий бесцветный или светлый, образующий белые, желтые, чаще зеленые или темно-зеленые колонии. Конидии одноклеточные, шаровидные или эллипсоидные, светлые или бесцветные, часто скученные в небольшие головки.

Эти грибы в большом количестве встречаются в почвах тайги, целинных, лесных и лесолуговой зоны, т.е. в почвах, богатых органическими остатками. Также, достаточно обильно они заселяют культурные почвы. В зоне подзолистых почв этих грибов больше, чем в других почвах. Особенно часто их обнаруживают в кислых почвах с низким значением рН (обычно 3,7-5,2) [2].

Наличие источников питания, а также абиотические факторы внешней среды: температура, влажность, рН среды оказывают существенное влияние на развитие грибов рода Тrichoderma и активность их взаимодействия с патогенами. Так, споры прорастают только в условиях оптимальной влагообеспеченности субстрата — 70 — 100%, а при 20% они не прорастают. Оптимальной для развития T. lignorum является температура 24 — 28°С, Т. harzianum — 24 — 25°С, а для Т. viride — 35°С. Штаммы Т. viride, Т. harzianum, Т. hamatum, Т. копingii проявляют гетерогенность по устойчивости к низким температурам. Холодоустойчивые штаммы при температуре 10°С на 81 — 97% заселяли склероции гриба Botrytis cinerea на 28-е сутки, а при температуре 5°С — до 50 — 71% на 60-е сутки. Реакция среды оказывает значительное влияние на рост грибов. Оптимальной для видов Trichoderma является кислотность почвы в пределах от 4 до 6.

Триходерма зеленая (Trichoderma viride) и триходерма древесная (Т. lignorum) появляются на чапек-агаре и на сусловом агаре вначале в виде бесцветного мицелия, который быстро разрастается и с возрастом приобретает зеленый цвет. Колонии этих грибов бывают различных оттенков, от лимонно-желто-зеленого цвета до темно-зеленого.

Trichoderma koningii образует колонии на картофельно-сахарозной среде. Вначале они белые, в виде ватообразных клубочков, впоследствии становятся светло-зелеными, но никогда не бывают темно-зелеными. Колонии на чапек-агаре распростертые, пушистые, вначале белые, с возрастом различных оттенков зеленого цвета, но не темно-зеленые [1, 3].

В последние годы в связи с бурным развитием биотехнологии возрастает интерес к микроскопическим грибам рода Trichoderma, которые привлекают внимание исследователей в связи с их практическим значением для получения биологически активных веществ, средств защиты растений и как активного деструктора растительных полисахаридов [3]. Разработка на их основе экологически чистых технологий является важным направлением в экологической биотехнологии [4].

Известно, что Trichoderma выделяет различные метаболиты: факторы роста (ауксины, цитокины и этилен), органические кислоты, внутриклеточные аминокислоты, витамины и свыше 100 антибиотиков. Фитогормоны Trichoderma (цитокинины), отвечающие за стимуляцию физиологических процессов растений, поступают в растительный организм и приводят к более активному его развитию [5, 6]. Из тканей гриба можно получить трихотецин — антибиотик и «Триходермин» — средство защиты растений от грибных болезней.

Микромицет рода Trichoderma является активным продуцентом фермента целлюлазы и способен к глубокой деструкции как клеточных стенок растений, так и отдельных трудно расщепляемых растительных полисахаридов: целлюлозы, гемицеллюлозы, пектина до мономерных форм. В настоящее время активно исследуются фенолоксидазы микромицета в связи со значительной ролью этих ферментов в биодеградации лигнина [7, 8].

В каких целях, и как правильно использовать Триходерма вериде?

В последнее время все чаще, люди, при выращивании культурных растений у себя на участке, предпочитают защищать их безопасными, экологически чистыми средствами, чтобы минимизировать вредное воздействие. Триходерма вериде — это инновационный препарат, относящийся к биологической защите. Он используется в качестве профилактического и лечебного средства при целом ряде заболеваний растений. О том, как использовать Триходерма верде: инструкция по применению, и отзывы о средстве проверивших его, далее в статье.

С какой целью применяется Триходерма

Производится данное средство на базе штамма грибков, которые называются сапрофитами. Эти грибки защищают растения благодаря тому, что паразитируют на других грибницах, уничтожают патогенную микрофлору. Он может выпускаться в виде порошка или жидкости. Чаще всего приобретают именно порошок. Он не только устраняет грибковые заболевания растений, но еще и благотворно сказывается на их росте, стимулируя его, повышает их иммунитет. Также при использовании данного средства повышается плодородность самой почвы. Триходерме вериде способен бороться с более 60 разновидностями различных болезнетворных грибков, которые могут вызвать такие заболевания, как:

Применяться препарат может для защиты таких растений, как: огурцы, дыни, капуста, редиска, картофель, перцы, баклажаны, виноград, плодово-ягодные деревья, комнатные растения. Также его применяют для защиты декоративных культур, цветов, хвойных растений. Во всех случаях препарат абсолютно безвредный.

Как работает это средство?

Этот грибок растет, размножается, вследствие чего выделяются специальные вещества: токсины, антибиотики и ферменты, которые подавляют, полностью уничтожают другие болезнетворные микроорганизмы, присутствующие на растении, в почве. Вещества, которые выделяет этот грибок, негативно отражаются на репродуктивной системе болезнетворных микроорганизмов, поэтому те не могут размножаться и дальше распространяться. Также препарат способствует обогащению почвы, благотворно сказывается на общем иммунитете растений, укрепляя его и делая их более выносливыми.

Преимущества

Данный препарат абсолютно безопасен для людей, животных, растений, окружающей среды в целом. Он не накапливается в плодах растений.

Его можно использовать вместе с другими препаратами на почвах любого типа. Продолжительность действия после обработки — примерно 1 месяц, после чего обработку следует повторить.

Как правильно использовать (инструкция)

С применением средства не сложно разобраться:

  • Препарат может применяться на разных этапах роста растений, а также его можно вносить в почву, чтобы обогатить ее, уменьшить количество вредной, патогенной микрофлоры в ней. Если обрабатывать семена, их за 1 день до посева следует замочить в растворе данного препарата (2%). Либо можно просто посыпать на них немного сухого порошка, не разводя его водой.
  • Рассаду перед высадкой обмакивают в смеси, приготовленной из земли, перегноя, воды и порошка в соотношении: 2:1:5 и 5 г порошка. Если рассаду высаживают на открытый грунт, в лунки могут налить перед этим немного 2%-го раствора. Либо можно просто посыпать в лунки немного сухого порошка.
  • Для овощей применяют стандартный рабочий раствор, приготовленный по инструкции. В первый раз их нужно обработать им после появления двух листков. Затем, чтобы избежать возникновения заболеваний, нужно обрабатывать их таким же раствором раз в 2−3 недели. Желательно делать это в сырую погоду, после дождя, либо вечером после захода солнца. Температура воздуха при этом не должна быть меньше +18 градусов по Цельсию.
  • Очень эффективен препарат при выращивании картофеля. Его обрабатывают при посадке, после того, как взошли первые ростки, в период бутонизации, а также после цветения.
  • Комнатные растения не требуется обрабатывать данным средством слишком часто, в отличие от уличных, они менее подвержены рискам подхватить те или иные болезни. Это можно делать при пересадке, при подкормке, летом, когда они выносятся на улицу на балкон

Когда и как применять регулятор роста «Экосил»: инструкция по применению препарата, его цена и отзывы.

Как стимулятор плодообразования «Томатон» поможет обеспечить хороший урожай? Об этом далее.

Отзывы о Триходерме

Отзывы о применении Триходлерма вериде в основном положительные. Но отмечают, что действие препарата возможно только на начальных стадиях или при использовании в целях профилактики. При сильном заражении растений препарат не действует.

Василий Л, 61 год, Варегово, Ярославская область

Препарат недорогой, отечественного производства. Использую его, когда растения только начинают всходить в профилактических целях, чтобы уберечь их от патогенных микроорганизмов. На личном опыте убедился в том, что Триходерме верде малоэффективен, если признаки болезни уже заметны на растении. Эффекта от него будет минимум и нужно использовать более сильные препараты. А вот в качестве профилактики он действительно хорошо действует, предотвращает заболевания растений. Так как он состоит из спор грибка, препарат абсолютно безвреден для человека. Я поливаю им растения, когда они только всходят, и уже плоды в период созревания. Могу открыть свой маленький секрет, с помощью которого можно увеличить запасы данного средства, не покупая новые упаковки. Для этого можно пропарить какое-нибудь зерно, положить его в миску, посыпать сверху этим порошком, накрыть сверху полиэтиленом и сделать несколько дырочек для воздуха. Нужно оставить это темном месте, чтобы температура была примерно 20 градусов. Через несколько дней сверху образуется зернистая зеленая шапочка. Это и есть наш гриб Триходерме. Можно сразу использовать его по назначению, либо сохранить на следующий год, упаковав в герметичный пакет.

Елена Земцова, Пятигорск

Многие жалуются, что этот препарат неэффективен и при видимых проблемах уже не поможет. А зачем доводить до того, чтобы растения заболели. Используя Триходерме верде, я успешно защищаю свои растения от болезней, потому что регулярно их обрабатываю. Начинаю с первых всходов и каждые две недели провожу профилактику, вплоть до созревания и сбора урожая. Это грибки, поэтому ничего опасного в них нет, хоть они и имеют в своем составе токсины, которые сами же вырабатывают. Нужно будет просто тщательно помыть урожай перед употреблением.

Мария, Краснодар

Мое первое применение Триходерма вериде было для защиты клубники. Результат мне понравился. Теперь всегда вношу этот препарат в почву, чтобы сеянцы успешно всходили, и не было полегания ростков. Дешевый, безопасный и эффективный препарат, который я успешно использую уже несколько лет. Растения перестали болеть, урожай очень хороший. От использования химикатов почти отказалась. Только колорадских жуков травлю и все.

Почему нужно использовать именно биологические препараты для защиты растений, и какие средства кроме Триходерма вериде можно для этих целей использовать на видео:

Всё о бегониях и не только.

Лист диморфанта

Страницы

пятница, 16 мая 2014 г.

Триходерма (Trichoderma spp.), «Триходермин», «Трихофит» и другие препараты

Это инсектофунгицидный биопрепарат для борьбы с болезнями сельскохозяйственных и других культур, нетоксичен для человека, теплокров­ных животных, пчел, рыб; не накапливается в почве, растениях; не влияет на вкус и запах выращенной продукции. В результате действия продуцируемых ферментов хитиназы и глюконазы способствует разложению полисахаридов и перевод веществ в доступные формы для растений, проводя гумификацию почв.

Трихофит подавляет развитие таких болезней как корневые гнили, серые и белая, фузариоз, аскохитоз, макроспориоз, фитофтороз и другие, является био­деструктором соломы и целлюлозных отходов.

После уборки зерновых на поле остаётся солома и стерня около 3—4 тонн на гектар. При оборудовании комбайнов измельчителями солома во время обмолота раз­брасывается по полю и непосредственно перед заделыванием в почву диско­вой бороной лущильником опрыскивается баковым раствором Трихофита (5 л Концентрата на 400 л воды на 1 га) и в баковый раствор добавляют 20 кг. аммонийного азота. Через 15 дней происходит частичная деструкция соломы.

Внесение обработанной Трихофит ом соломы улучшает физико-химические свойства почвы, в т.ч. и структурное состояние. Обусловлено это тем, что интенсивная переработка соломы микроорганизмами снабжает почву органическими вещест­вами и оказывает такое же влияние на гумусообразование, как и подстилочный навоз. При этом 1 т соломы эквивалентна 3—5 т навоза. С 3-х тонн соломы на 1 га пашни поступает примерно 20 кг азота, 5 кг фосфора, 60 кг калия, 4 кг натрия. Трихофит, наряду с защитой от болезней, усиливает мобилизацию фосфора и калия в растениях, стимулирует иммунную систему, рост и развитие растений, повышает их стойкость к болезням.

Препарат можно использовать как защиту растений от фитопатогенов на протяжении всего периода вегетации растений. Прекрасный результат дает Трихофит в закрытых грунтах.

При правильном и своевременном применении препарата повышается урожайность на 20—30%, снижается поражённость корневыми гнилями в 2—2,5 раза и значительно увеличивается всхожесть.

Лучше всего покупать и применять Триходермин , выпускаемый в виде порошка. В западных странах очень популярна эта форма выпуска.

То, что доктор прописал, или Как грибы помогают защитить растения от болезней

Заболевания растений, пожалуй, можно отнести в категорию личных врагов дачника. И дело не только в неприглядном внешнем виде (почерневших листьях, поникших побегах, мумифицированных или покрытых плесенью плодах), который навевает уныние и портит настроение… Болезни и не думают скромничать — иной раз добрая половина урожая достается им.

Здоровые растения в саду и огороде — мечта дачника

Естественно, борьба с ними ведется с незапамятных времен: сначала проблему пытались решить самыми простыми способами — обрезкой (или вырубкой) заболевших растений: времени и сил подобная работа отнимала немало, а вот ее эффективность оставляла желать лучшего. Потом в ход пошли настои и отвары растений, подручные народные средства — уже лучше, но полностью решить проблему с их помощью тоже не получилось.

Когда садоводы и огородники уже были близки к отчаянию, помощь пришла — против созданных в лабораториях синтетических фунгицидов природные патогенные формы оказались бессильны. На некоторое время… А потом они приспособились, и следующие поколения стали устойчивы к препаратам. Химики увеличили дозу яда — возбудители болезней поднатужились и выдали еще более стойкое (уже практически неубиваемое) поколение. Путь оказался в никуда: чем мощнее препараты, тем выносливее возбудители болезней, тем большие дозы требуются для их уничтожения, тем сильнее загрязняются почва, воздух, вода.

Ученые создают все более мощные синтетические фунгициды, которые загрязняют экологию

Так что — выхода нет? Ну что вы, конечно же есть! Только к решению проблемы нужно подойти иначе. Отставьте в сторонку ведерко с очередной порцией фунгицида — идя наперекор природе, грубо нарушая царящее в ней равновесие, мы априори обречены на поражение. Самое время вспомнить о микроскопических грибах, которые защитят растения куда лучше мощных препаратов. Похоже на сказку? Ну да, мы уже настолько уверились в собственном могуществе, что и мысли допустить не можем, что у природы есть свои механизмы защиты растений, причем совершенно безопасные для всего живого. А многие просто не знают о существовании грибов-антагонистов, поэтому вынуждены пользоваться химическими препаратами — растения ведь защищать надо. Пора исправить ситуацию, и начнем прямо сейчас!

Что такое триходерма (Trichoderma)

Сегодня мы поговорим о грибах рода Trichoderma, к которому относят виды: T. lignorum,, T. koningii, T. reesei, T. harzianum, T. Viride, T . longibrachiatum , T . pseudokoningi , T. pilulifermum , T . polysporum , T . hamatum , T . aureoviride . Редкими их не назовешь: они заселяют почвы, богатые органическими остатками — окультуренные и целинные, лесные, таежные и луговые.

Оставив научные термины специалистам, будем пользоваться определениями, понятными обычному дачнику, чтобы в процессе чтения не пришлось использовать справочную литературу. Итак, триходерма (Trichoderma) – это микроскопический почвенный гриб-сапрофит, который:

  • питается органикой (остатками растений и животных), активно разлагая ее, обогащает почву питательными веществами;
  • выделяет биологически активные вещества, угнетающие развитие и репродукцию возбудителей болезней, укрепляющие иммунитет растений;
  • паразитирует на грибах-патогенах (используя их тела и мицелий для питания), подавляя фитофтороз и вертициллез, корневые и плодовые гнили, увядания различной этиологии, паршу на овощных, плодово-ягодных и цветочных культурах;

Триходерма может подавлять фитофтороз

  • вступает в симбиоз с корнями (микоризу), усиливая питание растений;
  • некоторые виды вырабатывают фитогормоны (ауксин, этилен, цитокинин), стимулирующие рост и развитие растений;
  • синтезирует мощные природные антибиотики (триходермин, виридин и другие);
  • активно участвует в синтезе гумуса;
  • структурируют почву (обволакивая частицы земли прорастающим сквозь них мицелием).

Здесь важно понять, что триходерма — не супергерой, спешащий на помощь по нашему зову, — нет! Все вышеперечисленные свойства, крайне полезные для почвы и растений, — продукты его естественной жизнедеятельности.

Trichoderma viride в природе. Фото с сайта galeria.nagrzyby.pl

Только представьте, микроскопический гриб способен избавить наш сад и огород от таких масштабных проблем, как:

  • фузариоз;
  • фитофтороз;
  • альтернариоз;
  • трахеомикоз;
  • ризоктониоз;
  • вертицеллезное увядание;
  • черная ножка;
  • различные гнили.

И это далеко не полный перечень поверженных врагов!

Зачем нужны препараты

И здесь логично задать вопрос: почему же растения на наших участках болеют, почему триходерма не защищает их? Ответ прост: все дело в количестве. Грибы, как и все живые организмы, нуждаются в определенных условиях существования (температура, реакция и влажность почвы, наличие питания). Если их все устраивает, они будут развиваться (работать) на полную мощь, если же условия для их существования неблагоприятны — не ждите результативной отдачи, может статься так, что споры не смогут даже прорасти (к примеру, если влажность субстрата ниже 20%).

Частое использование химических препаратов губительно сказывается на почвенной микрофлоре

Не стоит сбрасывать со счетов и человеческий фактор — на почвенной биоте губительно сказывается применение химических препаратов (инсектициды, фунгициды, пестициды). Причем возбудители болезней гораздо устойчивее к синтетическим фунгицидам, чем грибы-антагонисты. Если в почве преобладают патогены — растения все силы будут тратить на борьбу с ними: о каком иммунитете и урожае можно вести речь!

Что делать

Если спешить некуда, можно просто ждать, пока количество полезных грибов в почве увеличится естественным путем, делегировав почетные обязанности восстановления гармонии матушке-природе. Через сколько лет затея увенчается успехом — сказать сложно, то есть радость в ближайшем будущем узреть на своем участке здоровые растения и насладиться богатым урожаем откладывается на неопределенный срок. Но есть и другой способ решения проблемы — простой и эффективный — препарат «ТрихоПлант».

Готовая суспензия живых микроорганизмов буквально вернет к жизни растения и почву, причем самым естественным образом, как это и происходит в природе. Биопрепарат «ТрихоПлант» можно использовать для:

  • защиты капусты от болезней (начиная с момента посева);
  • выращивания картофеля из семян;
  • посадки картофеля в грядки;
  • обработки рассады перед высадкой;
  • профилактики заболеваний комнатных растений;
  • осенней дезинфекции грунта в теплице;
  • орошения органики перед заделкой в почву;
  • лечения хвойных культур и так далее.

Конечно, панацею от всех садово-огородных болезней еще не изобрели, и «ТрихоПлант» тоже не всемогущ. Тем не менее, теперь у дачников появилась реальная возможность защищать растения и обеззараживать семена и почву экологически чистым способом, а это уже немало, согласитесь.

Нормы и способы применения «Триходермина»

Триходермин – средство нового поколения, выполняющее защитную функцию при выращивании овощных, плодовых, ягодных культур. Ежегодное использование грунта приводит к его истощению. Триходермин восполняет запасы полезных веществ, увеличивая урожайность и плодородность почвы.

Назначение средства

Препарат используется в области агрономии для защиты от вредителей и всевозможных заболеваний растений. Средство стимулирует рост зелени, повышает иммунитет, выступает ликвидатором грибков и плесени. Прочие характерные особенности удобрения:

  • Трихомедрин применяется на небольшой площади, преимущественно на огородах, дачах, отдельных приусадебных участках. Огородники-любители дают оценку данному удобрению как эффективному, безвредному средству. Препарат безопасен и содержит биологически активные составляющие.
  • Наблюдая на протяжении 30 лет за развитием растений с участием Триходерма Верде, ученые сделали вывод о его безвредности. Препарат безопасен для человеческого организма, почвы, растений, окружающей среды, экологии, не влияет на качество плодов и остаточных материалов. Вкус ягод и овощей не имеет химического послевкусия.
  • Применяется для улучшения структуры почвы, защиты ее от эрозии, обогащения микроэлементами. Активные вещества производятся грибковыми спорами Trichoderma sp, выполняющими дезинфицирующую функцию – сацукаллин, триходермин (входит в состав лекарства для человека «Трихопол»), виридин, глиотоксин и прочие. В результате выделяемые антибиотики подавляют вредное действие бактерий и грибковых спор.

Препарат показал отличный результат в лечении болезней, связанных с грибками и вредоносными микроорганизмами. Он предотвращает такие поражения растений:

  1. персиковая курчавость;
  2. капустная кила;
  3. фомоз;
  4. микроскопиоз;
  5. мучнистая роса и ее ложность;
  6. черные ножки;
  7. картофельный и томатный фитофтороз;
  8. плодовая парша.

Триходермы отлично работают в паре с сухой травой, мульчей, листвой, вытягивая с опавшего слоя питательные вещества для приготовления субстрата, помогающего их активному действию. Перегнивая, листовой шар привлекает червей и мокриц, рыхлящих почву.

Декоративные растения со временем теряют иммунитет: самостоятельно не могут защититься от бактериальных и грибковых заболеваний, плесени, вредителей, неблагоприятных погодных условий.

Пускать на самотек естественное гниение сухостоя опасно: это приводит к впрыскиванию в грунт вредных кислот, появлению в нем вредоносных насекомых.

Восполнить дефицит полезных грибков можно с помощью препарата «Триходермин».

  1. Опрыскивание семян перед высадкой в качестве отдельного удобрения или раствора для последующей обработки.
  2. Предотвращение болезней, а также их лечение и профилактика. Подходит для дикорастущих, огородных и декоративных, прихотливых растений.
  3. Обработка плодовых деревьев и ягодных кустов для улучшения состояния корневой системы, листьев, ствола.
  4. Профилактика здоровья почвы, насыщение ее витаминами и минералами.

Производимый эффект обусловлен наличием в препарате trichoderma lignorum, который лечит грунт от фитопатогенного действия организмов, негативно влияющих на корни зеленых насаждений, а также обеззараживает почву и произрастающие в ней растения.

Состав и форма выпуска

Выпускается в порошковом и жидком видах. Сухой порошок имеет более длительный срок хранения (3 года), зато водная суспензия легче в применении. После вскрытия упаковки сыпучего средства использовать его нужно незамедлительно: при контакте с воздухом и находящейся в нем влагой микроорганизмы быстро гибнут. Количество живых грибковых спор одинаковое: 1 мл жидкой и 1 г сухой субстанции содержат одинаковое количество активных компонентов.

Приготовление маточной суспензии из сыпучего материала:

  1. Пачку 10 г медленно ввести в 1 л теплой воды, непрерывно перемешивая.
  2. Раствор поставить в темное место при комнатной температуре (не ниже 16 °С) на 2 часа. За это время грибковые споры начинают активное действие. Суспензия годна для работы на протяжении 6 часов.

Препарат состоит из мицелия и спор гриба триходерма. В основе – грунтовой субстрат со следующими компонентами:

  • для сухой формы – ячмень;
  • для жидкости – раствор из торфа.

Средство также включает витаминный комплекс, химические составляющие (ускоряют борьбу с патогенными организмами), гриб trichoderma lignorum.

Принцип работы

Действие препарата обусловлено следующими эффектами:

  1. На момент внесения начинается активное выделение антибиотиков и действующих веществ (грибы размножаются с большой скоростью).
  2. Полезные микроорганизмы не дают размножаться патогенам.
  3. Выделение углерода, действующего на формирование фосфата, азота.
  4. Обогащение грунта питательными соединениями.
  5. Ускорение перегнивания и нейтрализации нитратов.
  6. Активизация иммунитета: растение стойко переносит влияние негативного воздействия среды, вредителей, патогенных микроорганизмов.

Инструкция по применению

Триходермин – препарат четвертого (самого низкого) класса опасности, но несмотря на это обращаться с ним следует осторожно.

Хранение и меры предосторожности

Временных ограничений по работе с препаратом не установлено. Вносить его можно при условии использования перчаток, респиратора и защитных очков: без этих средств защиты есть риск попадания на слизистую и ее последующего раздражения. После обработки требуется вымыть лицо, руки, другие части тела хозяйственным мылом.

В случае попадания в организм необходимо немедленно обратиться к врачу. Первая помощь при происшествии заключается в приеме активированного угля из расчета 1 таблетка на 10 кг массы тела. Запить медикамент следует тремя стаканами чистой питьевой воды.

Инструкция по применению Триходермина предписывает хранить его в запакованном виде 3 года при температуре не выше 18 °С. После вскрытия применяют на протяжении 6 часов: по истечении указанного времени действие препарата становится непредсказуемым.

Совместимость

Совместим со всеми органическими препаратами. Не допускается взаимодействие с ядохимикатами, в том числе с пестицидами. Схема работы с «химией» имеет односторонний характер: ее можно применять после Триходермина, но не наоборот.

Иностранные производители рекомендуют не смешивать споры отличающихся грибов в одном препарате, а вместо этого использовать поочередно средства с различными грибными штаммами:

Распространены, помимо trichoderma sp, trichoderma viride и trichoderma harzianum. Их введение зависит от конкретного субстрата, на котором выращиваются организмы. Это могут быть:

  • торф;
  • солома;
  • опилки;
  • навоз.

Российские аналоги содержат все три типа грибов.

Нормы и схемы использования

Применяют препарат в профилактических и лечебных целях в качестве удобрения семян, рассады, грунтового покрытия.

В мерах профилактики проводят обработку в момент высадки или пересадки растения, приготовив раствор из 5 г порошка и 5 л воды и залив его в грунт перед работой на огороде.

Для лечения следует подготовить раствор с такой же дозировкой. Затем вынуть насаждения и очистить их корни от земли, гнили секатором, окунуть корневую систему в разведенную суспензию на несколько минут и посадить растения.

Обеззараживание почвы

Улучшить структуру грунта и его качество можно, применив раствор из 100 мл препарата на ведро воды. Смесь делают в пропорции 1 г препарата на 1 кг почвы.

Семена и рассада

Способ обработки – опудривание из расчета 10 г на 3 стакана семян. В емкость насыпают семена, сверху препарат, хорошо встряхивают. Посев начинают через сутки.

Порченные посевные материалы следует обрабатывать химикатами: биологический препарат результата не даст.

Для рассады подойдет «болтушка» из 2 стаканов земли, 1 ст. перегноя, 5 г препарата в порошке, 5 л воды. Все сухие компоненты нужно смешать и разбавить водой, во время высадки обмакивать в полученной субстанции корневище.

Клубни и луковицы

Приготовить раствор – 50 мл на полведра воды (для 1 мешка картофеля). Перед посевом замочить в жидкости клубни. Для луковиц применяется 3% смесь.

Для овощных и декоративных культур

  • Семена готовят к посеву путем обработки раствором из расчета 20 мл препарата на 1 кг посадочного материала. Можно добавлять сразу в лунку во время посадки с дозировкой 2-5 мл на ямку.
  • Зараженные растения обрабатывают раствором препарата с водой (1:100). Порча насаждений характеризуется увяданием, пожелтением листьев, преждевременным опаданием цветов.
  • В качестве профилактики опрыскивают молодую зелень после появления двух-трех листков в пропорции 300 мл на 10 л теплой воды. Периодичность – один раз в две недели.

Плодово-ягодные культуры

Заражение растений ликвидируют раствором 150 мл на ведро воды после формирования первых почек. Частота – один раз в 20 дней.

Для виноградника

Опрыскивание проводят 1 раз в 10 дней раствором 0,05 л Триходермина на 10 л воды.

Комнатные растения

Удобряют субстанцией, приготовленной в пропорции 0,025 л на 1 л воды. Орхидеи, растущие на мхе или торфе, обрабатывают раствором из 5 мл препарата и 1 л воды с дозой 50 мл на 1 кг субстрата.

Сохранение и повышение плодородия

Для улучшения качества грунта нужно поливать его смесью 30 г препарата на ведро воды. При бедной почве (торфяники, речной намыв) дозировку уменьшают в три раза. Схема введения с периодичностью 10 дней – 1,5 л на 10 м2. Перед этим следует хорошо увлажнить землю.

Последнюю подкормку препаратом проводят при температуре воздуха не ниже 15 °С для подготовки грибов ко «сну». Споры переходят на следующий год.

Обработка для профилактики и лечения

Положительный результат виден при комплексном подходе: сочетании обработки семян, рассады и дальнейшей профилактики. При поражении во время цветения лечение не прекращают, поскольку на пчел и мед препарат не влияет.

Растение Обработка Дозировка, г/л
Картофель, огурцы, помидоры Оставить на 60 минут перед посадкой 5/1
Опрыскать в вегетационный период, расход 5 л/100 м2 40/5
Декоративные культуры и цветы Замочить корни рассады или семена, оставив на 2 часа в темном месте 5/1
Опрыскать в период роста 20/5
Капуста Вымочить семена в течение 2 часов, высушить в тени 5/1
Виноград, плодово-ягодные деревья Опрыскать во время вегетации 30/5

Преимущества и недостатки

  • безопасен для полезных насекомых (пчел);
  • нетоксичен;
  • безвреден для окружающей среды, человека и растений;
  • не остается в плодах и ягодах;
  • применение на всевозможных видах грунта;
  • возможность использовать с другими средствами, кроме медь- и ртутьсодержащих;
  • высокий показатель усвояемости;
  • действие на протяжении месяца;
  • повышение иммунитета.
  1. неэффективен и экономически невыгоден при использовании на больших площадях;
  2. действие медленное в сравнении с химикатами.

Цена и точки продажи

Стоимость препарата – около 330 рублей. Купить его можно в специализированных магазинах или у фирм-представителей.

Аналоги средства «Триходермин»

На рынке биопрепаратов представлены:

Триходермин – средство, генерирующее активные вещества, которые способствуют быстрому росту и нормальному развитию зеленых насаждений. Препарат практически безвреден и обладает широким спектром действия.

препарат для защиты растений от болезней

Изобретение относится к микробиологической промышленности, к производству средств защиты растений. Препарат для защиты растений против болезней содержит, мас.%: биомассу штамма гриба Trichoderma viride Pers ex S.F. Gray 16 ЦКМ F-59М 80-90; микрокристаллическую целлюлозу 5-10; соли магния 5-10. Препарат обладает антагонистической активностью против широкого спектра возбудителей болезней сельскохозяйственных культур и может применяться совместно с химическими пестицидами. 8 табл.

Рисунки к патенту РФ 2170511

Изобретение относится к микробиологической промышленности, к производству средств защиты растений.

Одним из основных источников возбудителей болезней растений является почва, в которой развиваются и сохраняются в виде спор фитопатогенные грибы, такие как Fusarium, Helminthosporium, Rhisoctonia, Pythium, Sclerotium, Alternaria, Verticillium. Для борьбы с почвенными патогенами используются главным образом химические фунгициды. Однако интенсивное использование химических препаратов приводит к экологическим нарушениям, к появлению более устойчивых штаммов патогенных микроорганизмов и к другим нежелательным последствиям.

Все шире в практике сельскохозяйственного производства используется интегрированная система защиты растений, которая включает использование биологических препаратов, в том числе на основе антагонистов, подавляющих рост фитопатогенов.

Известен штамм Trichoderma harzianum, который обладает высокой биологической активностью против Sclerotium rolfsii, вызывающей корневые гнили овощных культур (1). Однако он эффективен против возбудителей болезней только овощных культур. Известен также штамм Trichoderma harzianum, который подавляет рост патогенов, вызывающих серую гниль виноградников и млечный блеск плодовых деревьев (2). Недостатком этого штамма является то, что он активен только против возбудителей болезней виноградников и плодовых деревьев.

Наиболее близким к предлагаемому изобретению является штамм Trichoderma vir >

Известен препарат Триходермин-10, сухой порошок, рекомендуемый против корневых и стеблевых гнилей овощных и зерновых культур, а также хлопчатника (3). Препарат изготавливают, наращивая биомассу гриба на твердом носителе (зерне, торфе, соломе) в течение длительного времени (до 14 суток). Недостатком этого препарата является неудобная товарная форма, так как, если необходима аэрозольная обработка (полив вегетирующих растений), перед применением необходимо смывать споры гриба с носителя водой.

Известен препарат на основе штамма Trichoderma harzianum, имеющий коммерческое название Фиор II, который используют для защиты виноградников и плодовых деревьев от некоторых болезней, вызываемых грибными патогенами (3). Препарат представляет собой споровую массу гриба и продуцируемые грибом пептиды. Получают препарат, культивируя гриб в жидкой среде, разлив ее тонким слоем на подносы, до полного созревания спор. Затем всю биомассу высушивают, тонко размалывают и просеивают. Порошок содержит живые споры, хорошо растворяется в воде, однако такой способ производства длителен по времени и трудоемок.

Известен жидкий препарат на основе Trichoderma vir >

Наиболее близким к предлагаемому изобретению является пастообразный препарат на основе гриба Trichoderma harzianum, используемый для борьбы с аскохитозом, белой и черной стеблевыми гнилями огурцов и томатов (4). Препарат готовят, выращивая биомассу на твердом субстрате (зерна ячменя, пшеницы) в течение 5-7 сут, затем сушат и размалывают. Для приготовления пасты в 3-5% раствор прилипателя, в качестве которого используется карбоксиметилцеллюлоза (КМЦ), добавляют 30-50 мас. % сухой размолотой биомассы гриба. КМЦ в этом препарате улучшает спороношение гриба и его приживаемость после нанесения на стебли, стимулирует рост гриба, а также всхожесть семян и развитие проростков огурцов и томатов. Недостатками этого препарата являются многостадийность, длительный срок и трудоемкость его приготовления.

Задачей изобретения является получение штамма Trichoderma vir >

Задача решается тем, что предложен штамм гриба Trichoderma viride Pers ex S.F.Gray 16, высоко активный против широкого спектра грибных патогенов, и на его основе получают препарат, содержащий мас.%:
Биомасса штамма гриба Trichoderma viride Pers ex S.F.Gray 16 — 85-92
Карбоксиметилцеллюлоза — 3-5
Соли магния — 5-10
Препарат обладает антагонистической активностью против возбудителей болезней сельскохозяйственных культур.

Штамм Trichoderma vir >

Штамм характеризуется следующими признаками.

Штамм Trichoderma vir >

На сусло-агаре гриб образует войлочные колонии белого цвета, которые в течение 3-х дней достигают размера 80х80 мм. Спороношение наблюдается на третий день роста и развитие мицелия достигает максимума на 5-е сутки. К этому сроку колонии гриба приобретают зеленый цвет. Цвет обратной стороны беловато-зеленый.

В зависимости от состава питательной среды и условий культивирования гриб может образовывать глубинные конидии и хламидоспоры.

Оптимальной температурой роста является 30 o C. Однако штамм растет в широком диапазоне температур от 20 до 35 o C. При 5 и 40 o C споры прорастают, но мицелий не развивается, спороношение отсутствует.

Предлагаемый штамм растет в интервале значений pH от 2,5 до 9,5. Оптимальное значение pH — 5,5-6,5. В более кислых условиях (pH 2,5 — 5,0) и в более щелочных (pH 7,0 — 9,5) изменяются морфологические характеристики культуры: замедлено спорообразование, структура поверхности газона становится крупинчатой (при щелочных pH) или крупно-клочковатой (при кислых значениях pH).

Отношение к источникам углерода. Хорошо усваивает глюкозу, глицерин, сахарозу. Может расти на средах, содержащих галактозу, лактозу, мальтозу, крахмал. Не усваивает целлюлозу и хитин.

Отношение к источникам азота. Усваивает аммонийные формы азота и органический азот аминокислот, Восстанавливает нитраты.

Штамм Trichoderma vir >

Гриб штамма Trichoderma vir >

Предлагаемый штамм устойчив к антибиотикам: ристомицину, бензилпенициллину, тетрациклину, левомицетину, неомицину, стрептомицину, гентамицину, полимиксину, ампициллину.

Штамм Trichoderma vir >

Высокая степень устойчивости к химическим пестицидам позволяет использовать предлагаемый штамм в интегрированной системе защиты растений совместно с химическими препаратами.

Штамм Trichoderma vir >

При глубинном культивировании на разных средах (синтетические, органические, органо-синтетические) выход биомассы составляет от 16 до 60 г/дм 3 .

Через 20 часов культивирования в жидкой питательной среде 90-100% всех поверхностных конидий, внесенных в среду, прорастают. Мицелий представляет собой в это время тонкие прозрачные несептированные гифы. Через 35-40 часов культура гриба представляет собой созревший мицелий, который становится зернистым, образуются глубинные конидии и хламидоспоры. Оболочки клеток утолщаются, начинают образовываться интеркалярные (внутренние) и терминальные (конечные) хламидоспоры, которые созревают к 40-50 часу. Интеркалярные споры соединены по 3-5 штук вместе, имеют овально-продолговатую форму. Терминальные хламидоспоры — одиночные, округлые. Через 40-50 часов начинается лизис мицелия.

Глубинные конидии начинают прорастать через 12 часов, к 21 часу практически все конидии прорастают. Хламидоспоры так же, как поверхностные конидии, начинают прорастать позже — только через 16 -18 часов.

Глубинные конидии менее устойчивы к повышенной температуре. Они не выдерживают прогревание при 60 o C даже в течение 5 мин. Прогревание при 50 o C в течение 10 мин сохраняет жизнеспособными только отдельные конидии. При 40 o C прорастаемость конидий зависит от времени обработки: чем дольше, тем больше гибельное воздействие температуры.

Пример 1. Штамм Trichoderma vir >

Образцы земли в количестве 1 грамм суспендировали в 100 граммах воды и гомогенизировали при 400 об./мин. После осаждения частиц почвы порции супернатанта разводили серией стерильного физиологического раствора. 0,1 мл этих серийных разведений высевали на чашки Петри со средой Чапека или картофельно-декстрозного агара. Полученные чистые клоны грибов рода Trichoderma оценивали по их антагонистической активности против различных штаммов фитопатогенных грибов (тест-объектов) методом «встречных культур». Для этого на плотной питательной среде (Чапека или картофельном агаре) петлей параллельно друг другу на расстоянии 2 см от диаметра чашки Петри засевали исследуемые штаммы и тест-объект. Чашки выдерживали в термостате при температуре 28 o C в течение 7 суток. Затем оценивали визуально площадь, занимаемую каждой культурой. Если штамм Trichoderma занимал больше половины чашки Петри, он считался активным по отношению к тест-объекту.

Наиболее активный штамм был определен как штамм Trichoderma vir >

Пример 2. Культивирование штамма Trichoderma vir >

3-5 миллионов поверхностных конидий гриба помещают в колбы объемом 750 мл с 150 мл органо-синтетической среды следующего состава (на 1 л среды):
Сернокислотный гидролизат БВК — 70 мл;
Глицерин — 30 мл
Двузамещенный фосфат калия — 0,5 г
Однозамещенный фосфат калия — 0,5г
Сернокислый магний 7-водный — 0,25 г
Сернокислый аммоний — 3,0 г
Вода питьевая — До 1 л
Культивируют на качалке при 180 об./мин при 30 o C в течение 40-60 часов. В регулярно отбираемых пробах культуральной жидкости контролируют значение pH и сухой вес биомассы гриба. Через 20 часов культивирования в жидкой питательной среде 90-100% всех поверхностных конидий, внесенных в среду, прорастают. Мицелий представляет собой в это время тонкие прозрачные несептированные гифы. Через 35-40 часов культура гриба представляет собой созревший мицелий, который становится зернистым, образуются глубинные конидии и хламидоспоры. При микроскопировании культура гриба в этот период представлена в основном мицелием, содержащим до 10% хламидоспор. pH при этом снижается с 6,9 до 2,5. Максимальный выход биомассы наблюдается к 40 часам культивирования и составляет 68 г/л. Биомассу гриба получают, отделяя остатки питательной среды сепарированием.

Пример 3. Изучение антагонистической активности штамма Trichoderma vir >

Антагонистическую активность штамма Trichoderma vir >

Клетки гриба штамма Trichoderma vir >

Таким образом, штамм Trichoderma vir >

Пример 4. Изучение совместимости штамма Trichoderma vir >

Совместимость штамма Trichoderma vir >

Как видно из таблицы 5, штамм Trichoderma vir >

Пример 5. Получение препарата на основе штамма Trichoderma vir >

К биомассе, полученной, как описано в примере 2, добавляют натриевую соль карбоксиметил целлюлозы (КМЦ) в качестве прилипателя в количестве 5% от объема биомассы и прокаленный хлористый магний (стабилизатор) в количестве 10%. Смесь тщательно перемешивают и оставляют на сутки для разбухания целлюлозы. Массу периодически перемешивают. Препарат имеет следующий состав мас.%:
Биомасса штамма гриба Trichoderma viride Pers ex S.F. Gray 16 — 85
КМЦ — 5
Хлористый магний — 10
Полученный таким образом препарат на основе штамма Trichoderma viride Pers ex S. F. Gray 16 может храниться до 3-х месяцев при температуре +15 — +30 o C и до 6-ти месяцев при +4 o C. Влияние состава препарата на сохранение биологической активности гриба приведены в таблице 6.

Как следует из данных табл. 6, КМЦ способствует сохранению биологической активности препарата.

Пример 6. Получение препарата на основе штамма Trichoderma vir >

К биомассе, полученной, как описано в примере 2, добавляют КМЦ (прилипатель) в количестве 3% от объема биомассы и прокаленный сульфат магния (стабилизатор) в количестве 5%. Смесь тщательно перемешивают и оставляют на сутки для разбухания целлюлозы. Массу периодически перемешивают. Препарат имеет следующий состав мас.%:
Биомасса штамма гриба Trichoderma viride Pers ex S.F.Gray 16 — 92
КМЦ — 3
Сульфат магния — 5
Полученный таким образом препарат на основе штамма Trichoderma viride Pers ex S. F. Gray 16 может храниться до 3-х месяцев при температуре +15 — +30 o C и до 6-ти месяцев при +4 o C.

Пример 7. Испытания фунгицидной активности препарата на основе штамма Trichoderma vir >

Препарат на основе штамма Trichoderma viride Pers ex S.F.Gray 16 был приготовлен, как описано в примере 5. Эффективность его оценивали путем предпосевной обработки семян ярового ячменя сортов Абава и Прима против корневых гнилей, вызываемых грибами родов Fusarium и Helminthosporium. Испытания проводили на делянках площадью 10 м 2 и 25 м 2 опытных полей ВНИИ сельскохозяйственного использования мелиоративных земель и Белорусского института защиты растений. Опыты проводили в 4-х кратной повторности. Результаты приведены в таблицах 6 и 7, 8.

Обработка семян препаратом на основе штамма Trichoderma viride Pers ex S.F.Gray 16 способствовала снижению семенной инфекции грибов родов Fusarium, Helminthosporium на уровне химических протравителей фенорама и байтана. Отмечено биостимулирующее действие препарата (более высокая кустистость продуктивных стеблей и число зерен в колосе). Благодаря большему количеству продуктивных стеблей на 1 м 2 прибавка урожая по отношению к контролю составила 3,5 ц/га, что на 1,8 ц/га больше, чем у химического протравителя.

Таким образом, на основе штамма Trichoderma viride Pers ex S.F.Gray 16, обладающего антагонистической активностью к широкому спектру грибных возбудителей болезней (относящихся к родам Fusarium, Rhizoctonia, Helminthosporium, Colletotrichum, Alternaria, Sclerotinia, Verticillium, Botrytis, Phytophtora, Actinomyces, Cladosporium, Aspergillus, Risopus, Epicoccum и Penicillium) получен препарат, эффективный против болезней растений. Препарат может храниться до 3-х месяцев при температуре +15 — +30 o C и до 6-ти месяцев при +40 o C. Препарат совместим с химическими пестицидами (ТМТД, Байлетон, Байтан, Карбафос, Висметрин, Талстар, Апплауд) в концентрациях, рекомендуемых для применения. Препарат можно применять путем предпосевной обработки семян зерновых культур в дозе 15-30 грамм на тонну семян.

Источники информации
1. Wells H.D., Bell D.K., Jaworski C.A. Efficacy of Trichoderma harzianum as a biocontrol Sclerotium rolfsii, Phytopathology, 62, 442, 1972.

2. Патент Франция N 2545099, C 12 N 1/14. Новый штамм Trichoderma harzianum, способ его выделения и культивирования, пептиды, продуцируемые этим штаммом, и применение штамма и новых пептидов или продуктов, полученных в процессе культивирования, как средство биологической борьбы в форме фитосанитарных препаратов — 1984.

3. Апсите А.Ф., Швинка Ю.Э., Стрикауска С.В., Виестурс У.Э., Лисовска А. Я. , Бичевскис Е.Я., Свока И.М., Беника Р.Г. Использование триходермина для защиты растений от фитопатогенных микромицетов, Вест. с.-х. науки N 9(397), с. 114-118, 1989.

4. Патент РФ N 2094991, A 01 N 63/04, A 01 G 7/00. Способ защиты растений огурца и томата от фитопатогенов.

Тридерм при аллергии

Комбинированный препарат для наружного применения. Оказывает противовоспалительное, противоаллергическое, антибактериальное и противогрибковое (фунгицидное) действие.

Действующее вещество и МНН

Гентамицин + Бетаметазон + Клотримазол (Gentamycin + Betamethasone + Clotrimazole)

Групповая принадлежность

Глюкокортикостероид + антибиотик-аминогликозид + противогрибковое средство

Состав и форма выпуска

Мазь. 1 г. мази «Тридерм» содержит:бетаметазон — 0,5 мг (в виде бетаметазона дипропионата 0,64 мг);клотримазол — 10 мг;гентамицин — 1 мг (1000 МЕ) (в виде гентамицина сульфата);вспомогательные вещества: парафин жидкий; вазелин белый.

В тубах по 15 г; в коробке 1 туба.

Крем. 1 г. крема «Тридерм» содержит:бетаметазон — 0,5 мг (в виде бетаметазона дипропионата 0,64 мг);клотримазол — 10 мг;гентамицин — 1 мг (в виде гентамицина сульфата);вспомогательные вещества: парафин жидкий; вазелин белый; спирт цетостеариловый; пропиленгликоль; цетомакроголь-1000; спирт бензиловый; натрия двухосновный фосфат дигидрат; кислота фосфорная; натрия гидроксид (для установления требуемого значения pH); вода очищенная (q.s. ad 1000 mg).

В тубах по 15 г; в картонной коробке 1 туба.

Фармакодинамика

Препарат сочетает в себе противовоспалительный, противозудный, противоаллергический и антиэкссудативный эффект бетаметазона дипропионата с противогрибковой активностью клотримазола и широким антибактериальным действием гентамицина сульфата.

Клотримазол оказывает противогрибковое действие (ингибирует синтез эргостерина клеточной мембраны грибов. Обладает широким спектром действия. Эффективен в отношении дерматофитов, плесневых грибов, грибов рода Candida, Malassezia furfur, Corynebacterium minutissimum, Streptococcus spp., Staphylococcus spp., Trichomonas vaginalis.

Гентамицина сульфат, антибиотик широкого спектра действия из группы аминогликозидов, действует бактерицидно и обеспечивает высокоэффективное местное лечение первичных и вторичных бактериальных инфекций кожи. Активен в отношении грамотрицательных микроорганизмов: Pseudomonas aeruginosa, Aerobacter aerogenes, Escherichia coli, Proteus vulgaris, Klebsiella pneumoniae; грамположительных микроорганизмов: Streptococcus spp. (чувствительные штаммы альфа- и бета-гемолитического стрептококка группы А), Staphylococcus aureus (коагулазоположительные, коагулазоотрицательные и некоторые штаммы, продуцирующие пенициллиназу).

Показания

Простой и аллергический дерматит, особенно осложненные вторичным инфицированием, атопический дерматит (в т.ч. диффузный нейродермит), ограниченный нейродермит, экзема, дерматомикозы (дерматофитии, кандидоз, разноцветный лишай), особенно при локализации в паховой области и крупных складках кожи; простой хронический лишай (ограниченный нейродермит).

Противопоказания

Гиперчувствительность, туберкулез кожи, кожные проявления сифилиса, ветряная оспа, простой герпес, кожные поствакцинальные реакции, открытые раны. C осторожностью: беременность (I триместр), детский возраст.

Побочные действия

Местные реакции: чувство жжения, эритема, экссудация, нарушение пигментации, зуд.Побочные реакции, обусловленные бетаметазоном: чувство жжения, зуд, раздражение и сухость кожи, фолликулит, гипертрихоз, угревидные высыпания, гипопигментация, периоральный дерматит, мацерация кожи, вторичная инфекция, атрофия кожи, стрии, потница.

Побочные реакции, обусловленные клотримазолом: эритема, шелушение, локальный отек, зуд, крапивница, мацерация кожи, парестезии.Побочные реакции, обусловленные гентамицином: гиперемия, зуд, жжение, раздражение, сухость кожи, фолликулит, гипертрихоз, стероидные угри, гипопигментация, аллергические реакции. При применении окклюзионных повязок — мацерация, инфицирование, атрофия кожи, стрии, потница.

При продолжительном лечении или нанесении на большую поверхность — развитие системных побочных эффектов: повышение массы тела, остеопороз, повышение АД, отеки, изъязвление слизистой оболочки ЖКТ, обострение скрытых очагов инфекции, гипергликемия, возбуждение, бессонница, дисменорея.

Передозировка

При длительном применении ГКС в высоких дозах возможно развитие симптомов гиперкортицизма. Лечение: постепенная отмена препарата.Применение клотримазола при местном применении не ведет к развитию симптомов передозировки.Длительное лечение гентамицином в повышенных дозах может привести к росту нечувствительной флоры.

Способ применения и дозы

На пораженные участки кожи наносят, слегка втирая, небольшое количество 2 раза в сутки. Длительность лечения определяется индивидуально и зависит от нозологической формы и тяжести заболевания. При дерматомикозе стоп средняя продолжительность лечения — 2-4 нед.

Особые указания

Необходимо избегать попадания в глаза. При появлении устойчивой бактериальной или грибковой микрофлоры следует отменить препарат, назначить соответствующую терапию.

Аллергия на trichoderma viride у подростков

Производные фенолов – наиболее распространенные загрязнения, поступающие в поверхностные воды со стоками предприятий нефтеперерабатывающей, сланцеперерабатывающей, лесохимической, коксохимической, целлюлозно-бумажной промышленности и др. Фенол и его гомологи являются трудно деструктирующимися соединениями, ингибирующими биосинтез микроорганизмов, что значительно затрудняет самоочистку водных объектов. Так, минимальные токсические дозы, уменьшающие на 50 % количество микроорганизмов, обеспечивающих обезвреживание опасных соединений в воде, для фенола, гидрохинона и катехина составляют всего лишь 22,1; 0,08; 31,8 мг/л соответственно. Таким образом, попадание в водоем даже незначительного количества фенольных соединений приводит к уменьшению способности водного объекта к саморегенерации с помощью имеющегося геобиоценоза и невозможности в дальнейшем дезактивации других загрязнений. Кроме того, фенол и его производные обладают высокой токсичностью для человека и относятся к высоко опасным веществам 2-го класса опасности. Предельно допустимая концентрация фенола в воде хозяйственно-питьевых и рыбохозяйственных объектов лимитирована до 0,001 мг/л [3].

Преимущество использования биологических методов деструкции объясняется тем, что микроорганизмы обезвреживают фенольные вещества, не оказывая отрицательного влияния на экосистему, и не вызывают появления новых загрязняющих агентов в окружающей среде. Деструктивные методы пригодны для вод с концентрацией фенолов до 1 г/л.

Способность видов рода Trichoderma утилизировать широкий набор углеродных субстратов, технологичность, сравнительно высокая скорость роста и низкая токсичность в отношении растений и животных предполагают возможность их использования, наряду с традиционными для этого рода отраслями биотехнологии, для биодеструкции фенольных соединений. Во многих работах было показано, что грибы рода Trichoderma могут быть весьма устойчивы к промышленным загрязнениям окружающей среды.

Целью работы был подбор активных штаммов рода Trichoderma для биологической деструкции фенола при поверхностном и глубинном культивировании.

Материалы и методы исследования

Для проведения исследований были отобраны 6 моноспоровых штаммов различных видов грибов рода Trichoderma, выделенных из почв различных лесорастительных зон Средней Сибири и Республики Тыва и обладающих стабильными культурально-морфологическими признаками: Trichoderma asperellum «Mg-6», Trichoderma asperellum «TH-11», Trichoderma harzianum «M99/5», Trichoderma koningii «ТСЛ-06», Trichoderma koningii «ТСГ», Trichoderma viride «Lg-1».

Фенолоксидазная активность штаммов рода Trichoderma определялась реакцией Бавендамма, широко используемой для быстрого отбора грибов с высокой активностью внеклеточной фенолоксидазы. Метод Бавендамма разработан для выявления оксидазной активности у дереворазрушающих базидиомицетов, однако используется и для дейтеромицетов, в том числе Trichoderma. Цветной реакцией Бавендамма обнаруживают не менее трех ферментов: п-дифенолоксидазу (лакказу), пероксидазу и 0-дифенолоксидазу (тирозиназу). В качестве субстрата был использован таннин, так как для дейтеромицетов из всех субстратов он признан универсальным [5]. Таннин добавлялся к агаризованной среде Чапека в количестве 0,2 %.

Для анализа изучаемые штаммы высевали на питательную среду Чапека следующего состава, г: глюкоза – 30,0; NaNO3 – 2,0; MgSO4 – 0,5; КCl – 0,5; K2HPO4 – 1,0; FeSO4 – 0,01; агар – 20,0, вода дистиллированная – 1000 мл с добавлением таннинов (0,1 г/л) вместо азотсодержащего соединения. Среду автоклавировали при 0,5 атм. в течение 30 минут, разливали в чашки Петри и засевали исследуемыми штаммами методом укола. Культивирование осуществляли в термостате при 25–27 °С в течение 9 суток. О выделении фенолоксидаз судили на основании появления пигмента в среде в процессе роста гриба. Тест считали положительным, если появлялась окрашенная зона агара под старым, молодым мицелием или за пределами роста колонии.

Для оценки способности роста штаммов Trichoderma в присутствии различных концентраций фенола, как единственного источника углеродного питания, использовали поверхностное и глубинное культивирование.

При поверхностном методе культура растет на поверхности твердой увлажненной питательной среды в виде мицелиальной пленки, которая субстратным мицелием всасывает ингредиенты питательной среды, а воздушным мицелием формирует репродуктивные органы. Этот способ культивирования обеспечивает полный цикл развития гриба, но является более медленным процессом из-за интрагифального транспорта питательных веществ от субстратного мицелия к растущим терминальным клеткам воздушного мицелия [6]. Фенол добавляли в среду Чапека вместо глюкозы в концентрациях 20; 50; 70 мг/л. Споры гриба наносили уколом в среду петлей в центр чашки Петри. Результаты снимали на 7 сутки.

Глубинный метод культивирования заключается в выращивании микроорганизмов в жидкой питательной среде при периодическом перемешивании. Этот способ обеспечивает возможность интенсивного роста мицелия, накопление продуктов обмена и высокий уровень механизации процесса, но не обеспечивает полного цикла развития мицелиальным грибам, и стадия спороношения в этих условиях у фенотипа слабо выражена или совсем не осуществляется [7]. Для этого использовали питательную среду Чапека, без добавления агара, содержащую в качестве источника углерода фенол в концентрациях 20; 50; 70 мг/л. Результаты исследований снимали на 14 сутки.

Определение концентрации фенола после культивирования проводили фотометрическим методом [2]. Метод основан на образовании оранжево-желтого комплекса фенола с пара-нитроанилином в щелочной среде.

Аликвотную часть анализируемой сточной воды объемом, не превышающим 5 мл, переносили в колбу вместимостью 25 мл, добавляли 1 мл диазотированного раствора пара-нитроанилина и доводили до метки поглотительным раствором (натрий углекислый, раствор 8 г/л). Диазотированный пара-нитроанилин готовился следующим образом: навеску 0,01 г пара-нитроанилина растворяют в смеси 10 мл дистиллированной воды и 2,5 мл соляной кислоты. К образовавшемуся раствору прибавляют 2,5 мл раствора натрия азотистокислого и через несколько минут раствор разбавляют водой до 50 мл. Раствор готовят в день проведения анализа. Оптическую плотность определяли при длине волны λ = 440 нм в кювете с рабочей длиной λ = 20 мм, относительно холостой пробы.

Все исследования проводили в трех повторностях.

Результаты исследования и их обсуждение

Для разработки основ использования штаммов грибов рода Trichoderma в целях биодеструкции фенолов необходимо было провести оценку их фенолоксидазной активности. Существуют работы, доказывающие, что ряд штаммов грибов рода Trichoderma способен окислять фенольные соединения [1, 4, 5]. Фенолоксидазную активность грибов обнаруживали в появлении пигмента. В данной работе на основании теста Бавендамма на агаризованной среде с танином установлено, что все исследуемые штаммы растут на питательной среде с таннином, но наибольшую фенолоксидазную активность проявили 3 штамма: Trichoderma asperellum «ТН-11», Trichoderma koningii «ТСГ» и Trichoderma asperellum «Mg-6», диаметр пигментированных пятен составлял 48 ± 0,5, 42 ± 0,5 и 40 ± 0,3 мм соответственно. Изолят Trichoderma viride «Lg-1» не проявил оксидазную активность и в дальнейших исследованиях не использовался.

Проведенные исследования по влиянию фенола на рост штаммов Trichoderma в условиях поверхностного культивирования показали, что они обладают различной чувствительностью к изменению концентрации фенола в среде. Так, при концентрации фенола в среде 20 мг/л наибольшая продуктивность была отмечена у штаммов Trichoderma asperellum «TH-11», Trichoderma koningii «ТСГ» и Trichoderma harzianum «M99/5». При концентрации 50 мг/л – у штаммов Trichoderma asperellum «TH-11» и Trichoderma koningii «ТСГ», а при концентрации фенола в среде 70 мг/л – у штамма Trichoderma koningii «ТСГ». При этом высокие концентрации фенола (50 и 70 мг/л) ингибировали рост штамма Trichoderma harzianum «M99/5». Отрицательное действие фенола на продуктивность штаммов Trichoderma asperellum «Mg-6» и Trichoderma koningii «ТСЛ-06» проявилось при всех концентрациях (рис. 1).

Рис. 1. Коэффициенты активности роста грибов рода Trichoderma в присутствии различных концентраций фенола в среде

Оценку степени биодеструкции фенола исследуемыми штаммами проводили в условиях глубинного культивирования, в качестве источника углерода использовали фенол с концентрациями 20, 50 и 70 мг/л. Концентрацию фенола в среде до и после культивирования определяли фотоколориметрическим методом.

Анализ результатов экспериментальных испытаний показал, что во всех случаях штаммы рода Trichoderma способны подвергать деструкции фенол, содержащийся в среде. Добавление фенола в среду в концентрации 20 мг/л показало, что наибольшую степень деградации проявил штамм Trichoderma harzianum «M99/5» – концентрация снизилась на 30 %. Штаммы Trichoderma asperellum «Mg-6» и Trichoderma koningii «ТСЛ-06» снизили концентрацию на 17,5 и 15 % соответственно, а штаммы Trichoderma asperellum «TH-11» и Trichoderma koningii «ТСГ» – менее чем на 9 %.

При концентрации фенола в среде 50 мг/л характерна наибольшая, по сравнению с другими начальными концентрациями, эффективность биодеструкции. Так, наблюдалось существенное снижение его концентрации штаммом Trichoderma harzianum «M99/5» на 95,5 %, штаммы Trichoderma asperellum «Mg-6» и Trichoderma asperellum «TH-11» снизили концентрацию на 46,6 и 42 % соответственно, штаммы Trichoderma koningii «ТСЛ-06» и Trichoderma koningii «ТСГ» – на 39 %.

При концентрации фенола в среде 70 мг/л штаммы Trichoderma asperellum «TH-11», Trichoderma asperellum «Mg-6» и Trichoderma harzianum «M99/5» снизили его концентрацию на 17,2; 14,3 и 12,9 % соответственно, штаммы Trichoderma koningii «ТСЛ-06» и Trichoderma koningii «ТСГ» – на 11,4 % (рис. 2).

Результаты экспериментальных испытаний показали, что исследуемые штаммы видов Trichoderma asperellum, Trichoderma koningii и Trichoderma harzianum проявляют внеклеточную фенолоксидазную активность, но обладают различной чувствительностью к изменению концентрации фенола в среде.

Скрининг штаммов для биодеструкции фенола показал, что при добавлении фенола в качестве единственного источника углерода и энергии в концентрациях 50–70 мг/л при поверхностном культивировании перспективными являются Trichoderma asperellum «TH-11» и Trichoderma koningii «ТСГ», а в условиях глубинного культивирования – Trichoderma harzianum «M99/5», Trichoderma asperellum «Mg-6», Trichoderma asperellum «TH-11», Trichoderma koningii «ТСГ».

В целях создания биопрепарата на основе триходермы при совмещении поверхностного и глубинного принципов культивирования в одной иммерсионной биотехнологической системе можно рекомендовать штаммы Trichoderma asperellum «TH-11» и Trichoderma koningii «ТСГ».

Аллергия на trichoderma viride у подростков

ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ

УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ

«МОРДОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.П. ОГАРЁВА»

Тема: Использование грибов рода Trichoderma в растениеводстве

. Характеристика грибов рода Trichoderma

. Механизм действия грибов рода Trichoderma на растения

. Механизм действия на фитопатогенные грибы

. Лигнолитическое действие грибов рода Trichoderma

. Биопрепараты на основе грибов рода Trichoderma

Список использованных источников

В условиях высокой специализации и концентрации сельскохозяйственного производства проведение защитных мероприятий — неотъемлемый фактор получения высоких и гарантированных урожаев сельскохозяйственных культур, сохранения их качества.

Высокая эффективность и универсальность химического метода защиты растений, быстрая окупаемость сделали его доминирующим в системе защитных мероприятий. Однако, широкое и повсеместное применение химических средств защиты растений приводит к появлению новых устойчивых форм вредных организмов, это в свою очередь, влечет за собой необходимость увеличения норм расхода препаратов и их ассортимента. Загрязняются почва, воздух, вода, возрастают остаточные количества химических препаратов и продуктов их распада в сельскохозяйственной продукции, наносится ущерб окружающей среде и здоровью человека.

Биологический метод борьбы основан на использовании естественных врагов вредителей, регулирующих численность последних в природе. При этом в очагах заражения вредителями создается искусственным путем высокая концентрация их врагов, что приводит к ликвидации этих очагов. В условиях загрязненной окружающей среды биологические методы борьбы с вредителями позволяют сократить или отказаться от применения химических средств — пестицидов и гербицидов.

В биометоде используются различные микроорганизмы, оказывающие положительное влияние на развитие растений, при этом угнетающие возбудителей фитозаболеваний. Огромный интерес ученых проявляется к почвенным грибам. В связи с вышесказанным целью работы явился анализ литературы о грибах рода Trichoderma, их характеристике и об их использовании в растениеводстве.

1. Характеристика грибов рода Trichoderma

Важная роль в подавлении развития фитопатогенов отводится грибам-антагонистам. Среди их представителей внимание исследователей привлекают грибы рода Trichoderma (порядок Hyphomycetales). К роду Trichoderma относятся следующие виды грибов: T. lignorum, T. harzianum, T. viride, T. koningii, T. reesei, T. pilulifermum, T. polysporum, T. hamatum, T. aureoviride, T. longibrachiatum, T. pseudokoningii [1].

У грибов рода Trichoderma мицелий бесцветный или светлый, образующий белые, желтые, чаще зеленые или темно-зеленые колонии. Конидии одноклеточные, шаровидные или эллипсоидные, светлые или бесцветные, часто скученные в небольшие головки.

Эти грибы в большом количестве встречаются в почвах тайги, целинных, лесных и лесолуговой зоны, т.е. в почвах, богатых органическими остатками. Также, достаточно обильно они заселяют культурные почвы. В зоне подзолистых почв этих грибов больше, чем в других почвах. Особенно часто их обнаруживают в кислых почвах с низким значением рН (обычно 3,7-5,2) [2].

Наличие источников питания, а также абиотические факторы внешней среды: температура, влажность, рН среды оказывают существенное влияние на развитие грибов рода Тrichoderma и активность их взаимодействия с патогенами. Так, споры прорастают только в условиях оптимальной влагообеспеченности субстрата — 70 — 100%, а при 20% они не прорастают. Оптимальной для развития T. lignorum является температура 24 — 28°С, Т. harzianum — 24 — 25°С, а для Т. viride — 35°С. Штаммы Т. viride, Т. harzianum, Т. hamatum, Т. копingii проявляют гетерогенность по устойчивости к низким температурам. Холодоустойчивые штаммы при температуре 10°С на 81 — 97% заселяли склероции гриба Botrytis cinerea на 28-е сутки, а при температуре 5°С — до 50 — 71% на 60-е сутки. Реакция среды оказывает значительное влияние на рост грибов. Оптимальной для видов Trichoderma является кислотность почвы в пределах от 4 до 6.

Триходерма зеленая (Trichoderma viride) и триходерма древесная (Т. lignorum) появляются на чапек-агаре и на сусловом агаре вначале в виде бесцветного мицелия, который быстро разрастается и с возрастом приобретает зеленый цвет. Колонии этих грибов бывают различных оттенков, от лимонно-желто-зеленого цвета до темно-зеленого.koningii образует колонии на картофельно-сахарозной среде. Вначале они белые, в виде ватообразных клубочков, впоследствии становятся светло-зелеными, но никогда не бывают темно-зелеными. Колонии на чапек-агаре распростертые, пушистые, вначале белые, с возрастом различных оттенков зеленого цвета, но не темно-зеленые [1, 3].

В последние годы в связи с бурным развитием биотехнологии возрастает интерес к микроскопическим грибам рода Trichoderma, которые привлекают внимание исследователей в связи с их практическим значением для получения биологически активных веществ, средств защиты растений и как активного деструктора растительных полисахаридов [3]. Разработка на их основе экологически чистых технологий является важным направлением в экологической биотехнологии [4].

Известно, что Trichoderma выделяет различные метаболиты: факторы роста (ауксины, цитокины и этилен), органические кислоты, внутриклеточные аминокислоты, витамины и свыше 100 антибиотиков. Фитогормоны Trichoderma (цитокинины), отвечающие за стимуляцию физиологических процессов растений, поступают в растительный организм и приводят к более активному его развитию [5, 6]. Из тканей гриба можно получить трихотецин — антибиотик и «Триходермин» — средство защиты растений от грибных болезней.

Микромицет рода Trichoderma является активным продуцентом фермента целлюлазы и способен к глубокой деструкции как клеточных стенок растений, так и отдельных трудно расщепляемых растительных полисахаридов: целлюлозы, гемицеллюлозы, пектина до мономерных форм. В настоящее время активно исследуются фенолоксидазы микромицета в связи со значительной ролью этих ферментов в биодеградации лигнина [7, 8].

2. Механизм действия грибов рода Trichoderma на растения

Многие виды грибов рода Trichoderma и другие полезные колонизирующие корни микроорганизмы улучшают рост растений и увеличивают урожайность культур, но долговременное улучшение могут вызывать только ризосферокомпетентные штаммы. В тепличном растениеводстве штамм Т-22 T. harzianum широко используется для защиты от болезней растений вместо химических фунгицидов, поскольку он безопасен для работников. Эффект биоконтрольного агента сохраняется дольше, чем эффект пестицидов, препарат дешевле пестицидов, препарат, в отличие от пестицидов, улучшал состояние корневой системы растений [5].

Для отдельных видов Trichoderma показана способность к увеличению роста и массы корней, что приводит к повышению урожайности. Во многих случаях реакции растений являются результатом прямых воздействий на растения, снижения активности вредной корневой микрофлоры, инактивации токсических метаболитов в корневой зоне. Полезные грибы увеличивают потребление питательных элементов и эффективность усвоения азота, а также солюбилизируют элементы из почвы. Генетическая и молекулярная основа этих эффектов неизвестна. У разных видов и сортов растений наблюдаются отличия в ответных реакциях на воздействие Trichoderma, по крайней мере, это показано для кукурузы. Недавно показано, что стимуляция роста растений под воздействием бактерий, фенотипически напоминающая ситуацию с Trichoderma Т-22, связана с тем, что бактерии выделяют летучие вещества, такие, как ацетоин и 2,3-бутанедиол. Колонизация корней также увеличивает скорость роста корней и всего растения, что приводит к повышению продуктивности культуры и урожая репродуктивных органов. Колонизация корней также помогает растению преодолеть абиотические стрессы и увеличивает усвоение питательных элементов [6].

Для выращивания в качестве стимуляторов роста гороха штамм перспективен, так как стимулирует рост корней и проростков, увеличивает пероксидазную активность, то есть не проявляет фитотоксичности [4].

Штаммы Trichoderma способствуют увеличению размера корневой системы, роста и жизнестойкости растений путем контроля ризосферной микрофлоры и влияя на обмен веществ растения. Ризосферный эффект может проявляться как долговременная колонизация ризосферы, что влияет на количественное улучшение отдельных показателей развития растения. Увеличение плотности корневой системы на глубине чрезвычайно выгодно для растений кукурузы и других культур, особенно в засушливые сезоны. В таких условиях колонизация корней штаммом Trichoderma снижает чувствительность растений к засухе.

Биопрепарат на основе видов Trichoderma перспективен для интегрированной защиты в полевых условиях. Грибы рода Trichoderma с ризосферным эффектом могут обеспечивать долговременную защиту даже при однократном применении в начале сезона, сохраняются на корнях, способны пролиферировать вместе с растущей корневой системой и оставаться жизнеспособными, по крайней мере, во время всей вегетации культуры. Таким образом, биологические препараты могут быть более эффективны, чем химические, в защите корней и ускорении роста растений.

Биопрепараты на основе Trichoderma способны подавлять возбудителей не только семенной, корневой и почвенной инфекции, но и развитие болезней плодов и листьев при нанесении препарата на поверхность этих структур.

Препарат может быть эффективен против мучнистой росы (B. cinerea) в теплице, милдью, возбудителей болезней газонных трав, таких, как бурая пятнистость (R. solani), Pythium spp. и талерные бляшки (S. homoeocarpa). Для борьбы с такими фитопатогенами конидии Trichoderma следует вносить каждые 10 дней. При высокой заболеваемости Trichoderma может колонизировать новые здоровые листья, плоды и цветы, зрелые ягоды, прорастать на цветах, но не на листьях клубники. Однако существуют некоторые ограничения для использования биопрепаратов на основе Trichoderma: они являются превентивными, т.к. чаще всего не способны контролировать уже развившиеся заболевания.

Биопрепараты на основе Trichoderma менее эффективны против системных заболеваний, чем против местных (например, они эффективны против фузариозной корневой плесени, но не активны против фузариозного вилта), на фоне высокой инфекционной нагрузки. Биопрепараты на основе Trichoderma можно применять только как часть интегральной системы контроля (химико-биологической системы). Во всех случаях для получения максимального урожая требуется использовать как биологические, так и химические агенты. Например, протравливание семян одновременно фунгицидом и пестицидустойчивым биопрепаратом на основе Trichoderma приводит к колонизации корней растения и повышает эффективность биопрепарата. Создается общая картина положительного влияния Trichoderma на рост растений и урожайность, хотя это происходит не везде и не всегда. Trichoderma обеспечивает устойчивость к различным стрессам. В оптимальных условиях для роста растений визуальные эффекты от влияния изолятов Trichoderma не видны.

Одним из возможных механизмов, привлекающих особое внимание, является устойчивость биоконтрольного агента к стрессам благодаря улучшению корневой системы и повышению жизнеспособности растений. Толерантность к высушиванию и повышенная усвояемость азота являются примерами этого механизма. Улучшение состояния корневой системы благодаря Trichoderma, возможно, приводит к появлению устойчивости к патогенам, которые непосредственно не контролируются.

В почве многие ионы постоянно переходят из нерастворимой в растворимую форму, что в значительной степени влияет на усвоение этих элементов корнями. Виды Trichoderma способны в значительной степени положительно влиять на переход многих ионов (фосфаты, цинк, Mn4+, Fe3+, Cu2+) из нерастворимых в растворимую форму, и показано влияние этого процесса на развитие болезни растений.

Некоторые штаммы Trichoderma являются мощными индукторами системной резистентности растений (SAR). Штамм T. harzianum, инокулированный на корни или листья, защищает растения от B. cinerea, независимо от места введения. Анализ листьев, устойчивых к фитопатогенам, показывает, что на них нет Trichoderma. Установлено, что способность к контролю мучнистой росы связана с индукцией резистентности растений. В растениях огурца, выращенного с использованием биопрепаратов, отмечено увеличение размеров растения и урожайности. Мицелий гриба проникает в кортекс корней. В растениях, обработанных спорами Trichoderma, увеличена активность хитиназы и пероксидазы и обнаруживаются фитоалексины, что является показателем SAR.

Инфекционность и способность поражать растения у многих фитопатогенов зависит от продукции пектинолитических, хитинолитических и целлюлолитических ферментов, сериновых протеаз, деградирующих клеточные стенки растительных клеток. Механизм биоконтроля, который могут реализовать виды Trichoderma — разрушение ферментов фитопатогенов, что приводит к снижению их инфекционности [9].

В последнее время появилось множество новых разработок, касающихся использования Trichoderma в качестве агентов биоконтроля для болезнетворных микроорганизмов и растений, стимуляторов роста. Было предложено несколько механизмов для объяснения положительного воздействия этих микроорганизмов на растение-хозяин. Один из факторов, который способствует их полезной биологической деятельность, связан с широким разнообразием метаболитов, которые они производят. Эти метаболиты не только непосредственно подавляют рост и деятельность патогенных паразитов, но и повышают устойчивость к болезням, запуская систему обороны в растении-хозяина. Кроме того, эти метаболиты также способны к усилению роста растений. Вторичные метаболиты Trichoderma, которые влияют на метаболизм растений, могут играть важную роль в сложных взаимодействиях этого агента биоконтроля с растениями и микроорганизмами [10].

Недавняя смена тенденции сельскохозяйственной практики применения синтетических удобрений и пестицидов в сельском хозяйстве фокусируется на использовании микроорганизмов, которые выполняют аналогичную функцию. Trichoderma является одним из самых популярных видов грибов коммерчески доступных, способствующих росту грибков (PGPF) и как агент биологического контроля. Эксплуатация разнообразных вторичных метаболитов, производимых различными видами Trichoderma, расширяет свои программы в сельском хозяйстве и смежных отраслях. Как результат, Trichoderma добилась значительного успеха в качестве мощного агента биологического контроля на глобальном уровне. Одобрение Trichoderma в научном сообществе основано на понимании механизмов ее действия против большого набора грибковых, бактериальных и в некоторых случаях вирусных инфекций. Применение конкретных целевых вторичных метаболитов имеет потенциальные возможности использования Trichoderma как фитопатогенов в качестве замены имеющихся в продаже [11, 12].

Исследования по эффективности биоудобрений на основе Azotobacter chroococcum, Pseudomonas striata и Trichoderma viride дали положительные результаты на примере роста рассады яблони. Azotobacter chroococcum и Trichoderma viride увеличили всхожесть семян до максимального уровня. При этом наблюдалось ускорение роста рассады за счет увеличения длины и диаметра растения. Trichoderma viride также оказалась эффективной против вредителей и болезней при условии достаточного количество влаги в сухой период. Самый высокий темп роста длины и диаметра рассады и хорошее развитие корневой системы наблюдалось при совместном использовании трех микроорганизмов: Azotobacter chroococcum + Pseudomonas striata + Trichoderma viride. Таким образом, «микробное трехстороннее действие» или комбинация из трех микроорганизмов дали лучшие результаты в производстве посадочного материала [13].

Штамм Screening of Fungi Isolated from Environmental Samples for Xylanase and Cellulase Productionof Fungi Isolated from Environmental Samples for Xylanase and Cellulase Productionof Fungi Isolated from Environmental Samples for Xylanase and Cellulase Productionof Fungi Isolated from Environmental Samples for Xylanase and Cellulase Productionof Fungi Isolated from Environmental Samples for Xylanase and Cellulase Production

Trichoderma hamatum GD12 уникален тем, что он может способствовать росту растений, осуществлять биоконтроль над болезнетворными микроорганизмами, находящимися в почве, также может вызывать системное сопротивление прикорневым патогенным микроорганизмам [31].

Таким образом, Trichoderma представляет собой эффективный биоконтрольный агент, который улучшает рост растений.

3. Механизм действия на фитопатогенные грибы

При исследовании биологии микромицета в первую очередь акцентируют внимание на его ингибирующую активность в отношении фитопатогенных грибов, таких как Fusarium oxysporum, Phytophthora parasitica и др. Поэтому грибы рода Trichoderma используются в мировой практике для создания и разработки биологических препаратов, исходя из высокого антагонистического потенциала, скорости роста и возможности культивирования в производственных условиях [4].

Биологическое регулирование численности фитопатогенов с помощью Trichoderma может происходить косвенно: а) в результате конкуренции за питательные вещества и пространство; б) в результате способности агентов биоконтроля синтезировать или сопротивляться метаболитам, которые препятствуют прорастанию спор фитопатогена (фунгистазис); г) способности к уничтожению клетки фитопатогена (антибиоз); д) способности модифицировать ризосферу — закисляя почву так, что болезнетворные микроорганизмы не могут расти.

Механизм отрицательного типа взаимодействия Trichoderma с фитопатогенными микроорганизмами недостаточно изучен на генетическом уровне. В последнее время появилось много свидетельств в пользу того, что биоконтроль является результатом различных клеточных процессов, а не только ферментативного гидролиза, как предполагалось ранее. Исследования подтверждают, что, по крайней мере, один комплекс ферментов — хитиназ — играет одну из главных ролей в отрицательных взаимодействиях Trichoderma с фитопатогенами [6].

Виды рода Trichoderma способны защищать растения от действия патогенов с помощью подавления фитопатогенных микроорганизмов, а также путем индуцирования системной и локальной резистентности растений. Такие прямые эффекты Trichoderma на рост и развитие растений очень важны для применения в сельском хозяйстве и для понимания роли грибов Trichoderma в природных и искусственных экосистемах.

Грибы Trichoderma проявляют видо- и штаммоспецифичность к разным видам фитопатогенов. Все виды Bipolaris и Alternaria в той или иной степени чувствительны к антагонистически активным микромицетам рода Trichoderma [14].

При оценке перспективного продуцента биологического контроля большое значение играет паразитизм на других грибах. Паразитизм представителей рода Trichoderma в большинстве случаев охарактеризован как некротрофный, а микофилия видов этого рода служит самостоятельным предметом изучения.

Активные в отношении фитопатогенов штаммы могут оказывать как положительное, так и отрицательное воздействие на растения, что необходимо учитывать при использовании их в практике сельского хозяйства. В случае рекомедации продуцента для создания биопрепарата возникает необходимость отбора штаммов и их оценки конкретно для каждого спектра фитопатогенов и классов растений.

Существует множество механизмов, посредством которых грибы Trichoderma осуществляют контроль фитопатогенов. Неудивительно, что разные штаммы обладают различными биоконтрольными способностями. Даже мутанты этих штаммов реализуют различные механизмы контроля фитопатогенов. Кроме того, что эти грибы вооружены самым разным «биологическим оружием», они относятся к высокоадаптивным к различным стрессовым факторам организмам и не специфичным по отношению к контролируемым ими фитопатогенам. Штаммы, лишенные одного механизма, быстро адаптируются и используют другой механизм.

Микопаразитизм считают самым важным механизмом действия биоконтрольных грибов рода Trichoderma. Показано, что регуляция микопаразитизма осуществляется многими генами и генными продуктами. Каждая функциональная ферментная группа представлена несколькими ферментами, различающимися по своим свойствам. Описано более 10 отдельных хитинолитических ферментов, установлена дивергентность и для b-1,3-глюканаз и протеаз. Регуляция каждой ферментной системы осуществляется по-разному, что делает регуляцию микопаразитизма чрезвычайно сложным процессом. Первый этап микопаразитизма обеспечивается более чем 20 генами и генными продуктами и регулируется сложными механизмами. Большинство генов синергичны друг другу. Сложный синергичный регуляторный механизм необходим только для осуществления атаки видов Trichoderma против других фитопатогенов. Неудивительно, что этот род объединяет много грибов, способных контролировать фитопатогенные грибы.

Конкуренция за местообитание и питательные вещества с фитопатогенами — один из «классических» механизмов биоконтроля у видов рода Trichoderma. Во многих случаях, когда очевидный микопаразитизм или антибиоз отсутствует, предполагается механизм конкуренции [9].

Микопаразит Trichoderma atroviride коммерчески применяется в качестве агента биологического контроля в отношении ряда фитопатогенных грибов. Микопаразитизм Trichoderma обусловлен разрушением клеточной стенки фитопатогенного гриба, повлекший за собой его уничтожение и гибель. Из этого следует вывод, что ферменты клеточной стенки (вместе с антибиотиками) являются основными факторами биоконтроля Trichoderma atroviride. Среди них гидролазы и хитиназы играют важную роль. Кроме того, атака Trichoderma на хост гифы сопровождается значительными морфологическими изменениями [15].

Взаимодействие между различными штаммами Trichoderma pseudokoningii и грибами арбускулярной микоризы Glomus mosseae и Gigaspora rosea изучено как в лабораторных условиях, так и в теплице. Все штаммы Т. pseudokoningii ингибируют прорастание G. mosseae и G. rosea [32].

гриб микромицет биоконтроль культивирование

4. Лигнолитическое действие грибов рода Trichoderma

При культивировании Trichoderma viride на жидкой питательной среде с добавлением твердого остатка соломы гречихи, культуральная жидкость исследуемого штамма проявляет высокую целлюлазную активность и не обладает фитотоксичностью. Данный субстрат рекомендован к использованию его для биоконверсии грибами рода Trichoderma viride.

Благоприятный состав твердого остатка соломы гречихи позволяет использовать его в качестве экологически чистого сырья для биоконверсии грибами рода Trichoderma viride, проявляющие высокую биологическую активность в отношении Fusarium oxysporum, а высокий титр спор в полученной культуральной жидкости (1 108 спор/гр.) дают основание рекомендовать этот субстрат для промышленного получения жидкого биопрепарата «Триходермин» [4].

Гидролиз ксиланаз и целлюлозы, это необходимый шаг в направлении эффективного использования лигноцеллюлозных материалов в природе. Лигноцеллюлозные отходы это большая часть твердых бытовых отходов в городах, тем самым представляя собой экологическую проблему. Исследования показали, что с помощью традиционных стратегий обращения с отходами не удалось снизить остроту этой проблемы. Использование микробных ферментов для переработки лигноцеллюлозных отходов, как было показано, может быть альтернативой, которая является эффективным и экономичным способом. Поэтому, учитывая промышленный потенциал ксиланаз и целлюлаз, и их потенциального использования в лигноцеллюлитическом обращении с отходами, становится перспективой для получения новых ферментов и микробных штаммов, продуцентов ферментов, которые смогут производить большое количество ксиланаз и целлюлаз по низкой стоимости. Химический гидролиз лигноцеллюлозы в настоящее время сопровождается образованием токсичных компонентов, которые оказывают токсическое воздействие на окружающую среду, следовательно, необходимо рассмотреть возможность использования микроорганизмов и их ферменты, которые обладают высокой специфичностью, незначительными потерями субстрата, и также чтобы побочные продукты являлись экологически чистыми [33].

Ксиланазы и целлюлазы находятся в широком изобилии в природе, они вырабатываются бактериями, грибками, простейшими, водорослями и т.д. Мицелиальные грибы, как сообщается, являются хорошими производителями лигнолитических ферментов с промышленной точки зрения из-за внеклеточного высвобождение ферментов, представлют высокую доходность в сравнении с дрожжами и бактериями, а также производство и несколько вспомогательных ферментов, необходимых для замещенных полисахаридов. Применение ксиланаз и целлюлаз в основном рассматривается для биоконверсии лигноцеллюлозных материалов, особенно остатков и отходов сельского и лесного хозяйства по производству продукции с высокой добавленной стоимостью, таких, как этанол топливо и другие химикаты [16]. Screening of Fungi Isolated from Environmental Samples for Xylanase and Cellulase Production

Биоконверсия лигноцеллюлозной биомассы в топливо требует стадии гидролиза для получения брожения сахара, как правило, которое осуществляется с помощью грибковых ферментов. Масштабный скринниг различных штаммов микроорганизмов позволит получить оптимальные ферменты для любого целевой сырья. Различные штаммы Trichoderma исследовали для гидролизного потенциала на таком травянистом лигноцеллюлозном субстрате как просо. Штаммы культивировали на микропластинах для ксиланазной и целлюлазной деятельности. Таким образом, было выявлено, что рост на просо способствует выработке ксиланаз. Штамм IK4 обладает самый высокий ксиланазной производительностью после роста на таком лигноцеллюлозном субстрате как просо [17].

5. Биопрепараты на основе грибов рода Trichoderma

Экологически безопасной альтернативой химическим пестицидам служат биологические препараты, созданные на основе природных микробных агентов регуляции численности фитофагов и фитопатогенов. Начало развитию биотехнологии микробных средств защиты растений было положено еще в XIX в. в работах известного российского ученого И.И. Мечникова, первого в мире создавшего биологический препарат на основе выделенного им из природы энтомопатогенного гриба Metarhizium anisopliae [18].

Первым грибным препаратом, разработанным на основе Trichoderma viride (lignorum) стал «Триходермин». Позднее, включая современный период, была разработана серия препаратов на основе Trichoderma harzianum, T. koningii, T. asperellum и др. В последнее время препараты, содержащие грибы рода Trichoderma, зарегистрированы под названиями «Глиокладин» и «Стернифаг» (ВИЗР и ЗАО «Агробиотехнология, г. Москва). На мировом рынке представлено также несколько биопрепаратов, являющихся аналогами Триходермина, которые могут быть альтернативой химическим средствам: «ТопШилд» (на основе T. harzianum T-22) и «Триходекс» (T. harzianum T-39) [9].

Грибные препараты получают не только глубинным, но и поверхностным, а также глубинно-поверхностным культивированием. Это связано с тем, что бластоспоры грибов, получаемые в глубинной культуре, не столь жизнеспособны и активны, как конидии, образуемые грибами на поверхности питательной среды. В последние годы более популярным стал способ поверхностного культивирования грибов на сыпучих субстратах [17, 19].

Триходермины изготовляют на основе массового (производственного) размножения этого гриба, с использованием разных растительных отходов и других субстратов (хлебного мякиша, соломенной резки, отходов зерна и хлебных злаков, перегретого торфа). Эти препараты применяют для подавления в почве возбудителей болезни льна, корневых гнилей, вертициллезного увядания хлопчатника и других инфекционных болезней сельскохозяйственных растений. Данный гриб также подавляет развитие многоядного паразита — склеротинии Sclerotinia sclerotiorum, вызывающего заболевание склеротиниоз многих растений, в том числе кукурузы и подсолнечника. Гриб образует два известных антибиотика: глиотоксин и виридин, обладающих антибактериальными и антигрибными свойствами (против патогенных бактерий и грибов) [2, 18].

«Триходермин» выпускается в виде сухого порошка с титром не менее 6 млрд. жизнеспособных спор в 1 г. В борьбе с болезнями сельскохозяйственных культур препарат применяют свежеприготовленным, если же такой необходимости нет, то его высушивают при 30-40°С и хранят в бумажных мешках в сухом помещении при 5-10°С. Срок хранения — 1 год. У препарата отсутствует вирулентность, токсичность и токсигенность по отношению к теплокровным животным и человеку [ 20].

В производстве препаратов важным завершающим этапом является приготовление препаративной формы (формуляция действующего начала). Препаративная форма тесно связана с технологией применения биопрепаратов и со сроком их хранения. От того, насколько она будет способствовать проявлению потенциала штамма-продуцента, зависит и эффективность микробного препарата. Современные разработчики биопрепаратов учитывают необходимость оптимизации препаративной формы, что недооценивалось на первых этапах развития биотехнологии. Кроме того, неотъемлемая часть технологического процесса получения биопрепаратов — их стандартизация и оценка качества. Без этого невозможно их рациональное использование в биологической защите растений [21].

Хотя главным преимуществом биопрепаратов является высокая степень экологической безопасности, их эффективность не всегда соизмерима с эффективностью химических пестицидов в связи с большей зависимостью от температуры, влажности, инсоляции. Для устранения этого необходимо дальнейшее изучение механизмов взаимодействия биоагентов с мишенью и с окружающей средой для усиления активности действующего начала [22]. Перспективны также исследования и разработка биопрепаратов полифункционального действия [23, 25]. Так, разработана технология получения комплексных препаратов серии «Хитозар Био», в которых клетки T. viride иммобилизуют на хитинхитозановых носителях [24].

В практике применения биопрепаратов для защиты растений до настоящего времени часто бытуют неверные представления по данному вопросу. В частности, считается, что биопрепараты менее эффективны и доступны, чем химические пестициды, а биопрепарат, введенный в почву или ризосферу, не способен влиять на фитопатогены в течение длительного периода времени [26, 27]. Поэтому биопрепараты эффективны для защиты семян от болезней проростков, но бесполезны для защиты растений в период вегетации. Считается также, что один биоконтрольный агент не может быть эффективен в различных условиях, на различных культурах и против широкого спектра патогенов, поэтому лучше применять смешанные препараты, а механизм действия биоконтрольного агента очень прост и контролируется только одним или несколькими генами и генными продуктами. Некоторые специалисты уверены, что регистрация биопрепарата — процесс легкий, недорогой и простой [28].

Мнение о том, что биопрепараты менее эффективны и доступны, чем химические пестициды, ошибочно. Действительно, сторонники биологического земледелия стремятся внедрить биопрепараты в систему, в которой пестициды занимают прочное положение и были более экономичными. Другими словами, они старались внедрить биопрепараты по схеме внедрения химических средств защиты. Но на международном рынке уже существует множество эффективных пестицидов для защиты семян, часто более дешевых; пестициды сохраняются на семенах дольше, чем биопрепараты, а химические средства более эффективно защищают семена при разных погодных условиях [29, 30].

Однако в сельском хозяйстве существуют ситуации, в которых биопрепараты могут быть более привлекательными, чем химические пестициды. Например, биопрепаратами можно заменять фунгициды с низкой эффективностью, к которым у патогенов развилась резистентность и которые не могут заменить другие химические средства. Замена или частичная замена биопестицидами опасных для окружающей среды химических пестицидов, применение биопрепаратов там, где использование химических средств невозможно. Наконец, без биологической защиты невозможно ведение биологического (органического) сельского хозяйства.

Следовательно, необходимо внедрять не только биопрепараты, но и новые концепции, которые бы заменили традиционные подходы [31].

В современных условиях резко возрастает роль защиты растений в системах земледелия, поскольку потери продукции растениеводства от вредных организмов в среднем составляют 17%. По данным специалистов, в России сельскому хозяйству наносят ущерб около 8 тысяч вредных организмов. Против 400 из них проводятся активные истребительные мероприятия, из которых наиболее распространен химический метод защиты растений.

Не отрицая ряда достоинств химических пестицидов, не следует забывать и о негативных последствиях его использования. Во-первых, широкое использование химических средств приводит к их накоплению в почве, водоемах, грунтовых водах, плодах и по трофической цепочке передается человеку. Во-вторых, при интенсивном применении химикатов у вредных организмов возникает устойчивость к ним.

В последние десятилетия для защиты растений от насекомых-вредителей и возбудителей болезней применяются биологические препараты, основой которых являются микроорганизмы и их метаболиты.

Обрабатывая семена кукурузы, сои, гороха, овощных культур, различными видами бактерий и грибов, ученые обнаружили целый ряд многообещающих форм. По их мнению, поиск биологических препаратов для обработки семян весьма перспективен.

В дальнейшем по мере его разработки, он все больше будет вытеснять химический метод, имеющий ряд недостатков. В настоящее время биологический метод следует сочетать с другими методами и все они вместе должны представлять единую систему защиты растений.

Список использованных источников

1. Штерншис М.В. Биологическая защита растений: учебник / М.В. Штерншис, С.У. Джалилов, И. В. Андреева, О. Г. Томилова; под ред. М.В. Штерншис. — М.: КолоС, 2007. — 264 с.

. Алимова Ф. К. Trichoderma/ Hypocrea (Fungi, Ascomycetes, Hupocreales): таксономия и распространение: учеб. / Ф.К. Алимова. — Казань: УНИПРЕСС ДАС, 2006. — 260 с.

3.Гнеушева И.А. Биологическая активность грибов рода Trichoderma и их промышленное применение / И.А. Гнеушева, Н.Е. Павловская, И.В. Яковлева // Вестник Орловского государственного аграрного университета . — 2010. — № 3. — C. 36-38.

4.Benitez T.B. Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains / T.B. Benitez, A.M. Rincon, M.C. Limon, A.C. Codon // International Microbiology. -2004. — Vol. 7, №4. — P. 60-63.

5.Алимова Ф.К. Промышленное применение грибов рода Trichoderma: учеб. пособие / Ф.К. Алимова, Д.И. Тазетдинова, Р.И. Тухбатова. — Казань: УНИПРЕСС ДАС, 2007. — 234 с.

.Бабицкая В.Г. Грибы — эффективные деструкторы лигноцеллюлозных субстратов: их морфологическая и физиолого-биохимическая характеристика / В.Г. Бабицкая. — М.: Новая Волна, 2003. — 38 с.

7.Claus H.M. Laccases: structure, reactions, distribution / H.M. Claus // Micron. — 2008. — Vol. 35, №2. — P. 6-10.

8.Алимова Ф. К. Некоторые вопросы применения препаратов на основе грибов рода Trichoderma в сельском хозяйстве. — Казань: Казанский государственный университет им. В.И.Ульянова-Ленина, 2006. — 4 с.

.Vinale F . Trichoderma secondary metabolites that affect plant metabolism/ F. Vinale , K. Sivasithamparam , E.L. Ghisalberti , S. Wood , M. Lorito // Nat Prod Commun. — 2012. — Vol. 11, №7. — P. 50-52.

.Keswani C . Unraveling the efficient applications of secondary metabolites of various Trichoderma spp. / C. Keswani , S. Mishra , B.K. Sarma ,

.S.P. Singh // Appl Microbiol Biotechnol. — 2013. — Vol. 2, №98. — P. 44-47.

.Triveni S. Optimization of conditions for in vitro development of Trichoderma vir >, R. Prasanna , A.K. Saxena // Folia Microbiologica . — 2012. — Vol. 57, № 5 . — P. 7-12.

.Raman J. Response of Azotobacter, Pseudomonas and Trichoderma on Growth of Apple Seedling / J. Raman // Department of Botany and Microbiology. — 2012. — Vol. 40, №3. — P. 83-90.

14.Коломбет Л.В. Грибы рода Trichoderma — продуценты биопрепаратов для растениеводства / Успехи медицинской микологии. — М., 2007. — С. 323-371.

15.Zeilinger S. Signal transduction in host sensing and mycoparasitic response of Trichoderma atrovir >, K. Brunner, B. Reithner , I. Peissl // Molecular Biotechnology . — 2012. — Vol. 8, №1. — P. 34-38.

.Inuwa M. Screening of fungi isolated from environmental samples for xylanase and cellulase production / M. Inuwa // Microbiol. — 2013. — Vol. 12, №6. — P. 23-28.

.Cianchetta S . Hydrolytic potential of Trichoderma spp. strains evaluated by microplate — based screening followed by switchgrass saccharification /

.S. Cianchetta , S. Galletti, P.L. Burzi , C. Cerato // Enzyme Microb Technol. — 2012. — Vol. 50, №6. — P. 10-16.

.Штерншис М.В. Тенденции развития биотехнологии микробных средств защиты растений в России / М.В. Штерншис // Вестник Томского государственного университета . -2012. — № 2. — С. 92-100.

.Садыкова В.С. Перспективы использования грибов рода Trichoderma в защите злаков от корневых гнилей в Сибири / В.С. Садыкова, П.Н. Бондарь // Вестник Крас ГАУ. — 2010. — № 2. — 34 с.

.Садыкова В.С. Биологическая активность сибирских штаммов Trichoderma как фактор отбора для создания биопрепаратов защиты растений нового поколения / В.С. Садыкова, Т.И. Громовых, А.Н. Лихачев [и др.] // Биотехнология, 2007. — №6. — 12 с.

.Громовых Т.И. Новые аборигенные штаммы грибов рода Trichoderma, распространенные на территории Средней Сибири / Т.И. Громовых, С.В. Прудникова, В.С. Громовых // Микология и фитопатология. — 2010. — Т. 35. — 56-61 с.

.Сидоров А.А. Эколого-биологические основы патогенеза злаковых культур при поражении возбудителями корневых гнилей. — М.: Общество фитопатологов, 2001. — 182 с.

.Горьковенко В.С. Фитопатогенный комплекс возбудителей корневых гнилей ярового ячменя / В.С. Горьковенко // Защита и карантин растений. — 2005. — № 8. — С. 32-33.

.Громовых Т.И. Фитопатогенные микромицеты сеянцев хвойных в Средней Сибири: видовой состав, экология, биологический контроль: автореф. дис. д-ра биол. наук / Т.И. Громовых; М-во образования РФ, Красноярск. гос. ун-т. — Красноярск, 2002. — 37 с.

26.Lord J.C. From Metchnikoff to Monsanto and beyond: The path of microbial control / J.C. Lord // J. Invertebrate Pathology. — 2005. — Vol. 89, №1. — P. 19-29.

27.Берестецкий А.О. Проблемы и достижения в области биологической борьбы с сорными растениями при помощи фитопатогенных грибов / А.О. Берестецкий // Микология и фитопатология. — 2004. — 14 с.

.Глупов В.В. Патогены насекомых: структурные и функциональные аспекты/ под ред. В.В. Глупова. М.: Круглый год, 2006. — 736 с.

.Орловская Е.В. Биологические аспекты использования энтомопатогенов для регуляции численности насекомых — вредителей леса / Е.В. Орловская // Информационный бюллетень ВПС МОББ, 2002. — № 33. — C. 141-146.

.Огарков Б.Н. Mycota — основа многих биотехнологий. — Иркутск: Время странствий, 2011. — 207 с.

.Штерншис М.В. Энтомопатогены — основа биопрепаратов для контроля численности насекомых. — Новосибирск: НГАУ, 2010. — 160 с.

.Новикова И.И. Биологическое обоснование использования полифункциональных препаратов на основе микробов-антагонистов в защите растений от болезней / И.И. Новикова // Защита и карантин растений, 2005. -№ 2. — С. 15-16.

33.Studholme DJ . Investigating the beneficial traits of Trichoderma hamatum GD12 for sustainable agriculture-insights from genomics /

.DJ. Studholme , B. Harris , L. Cocq , R. Winsbury , V. Perera , L.Ryder , J.L. Ward , MH. Beale , CR. Thornton , M. Grant // Front Plant Sci. — 2013. — Vol. 30, №4. — P. 258-259.

.Rubio MB . >, NM. Quijada , E. Pйrez , S. Domínguez, E. Monte , R. Hermosa // Appl Environ Microbiol. — 2013. — Vol. 10, №5. — P. 18-19.

Репетиторство

Наши специалисты проконсультируют или окажут репетиторские услуги по интересующей вас тематике.
Отправь заявку с указанием темы прямо сейчас, чтобы узнать о возможности получения консультации.

«Триходермин»: избавляем растения от патогенных грибков

«Триходермин» относится к средствам защиты нового поколения.

Чаще всего используется для борьбы с грибковыми заболеваниями и стимуляции роста.

Препарат создан на основе Trichoderma lignorum – грибков, способных паразитировать на чужих грибницах. Развиваясь, они вырабатывают антибиотики (глитоксин, веридин) и уничтожают патогенную микрофлору.

В препарат входят:

  • споры и мицелий гриба;
  • продукты его жизнедеятельности.

Паразитизм выражается в конкуренции за субстрат и активном разложении органических соединений патогенных грибков. Препарат выпускается в пластиковых ёмкостях 1,5, 5, 10 литров и в виде порошка.

Применяется для борьбы с серой и белой гнилью, чёрной ножкой, паршой, фитофторозом, аскохитозом и другими заболеваниями. Хорошо помогает при болезнях винограда, баклажан, гвоздки, арбузов, картофеля, огурцов и томатов.

Препарат стимулирует клеточный обмен, тем самым способствуя росту и развитию растений. Обогащает почву подвижными питательными веществами, успешно заменяя собой химические удобрения.

Техника применения

Препарат хранится на протяжении девяти месяцев.

Для работы с ним требуются меры защиты в виде перчаток и специальной одежды.

Считается неопасным для человека, животных и насекомых-опылителей (в частности, пчёл).

Не аккумулируются в плодах и ягодах, поэтому нет запрета на употребление овощей и фруктов после обработки.

Используется для борьбы с грибковыми заболеваниями корней и прикорневой зоны у комнатных растений.

Для получения раствора 5 граммов сухого препарата растворяется в 5 литрах воды. Средством обрабатывается почва, семена (20 миллилитров на килограмм). Можно промыть корни больного комнатного растения и пересадить его в другой горшок. У рассады в раствор обмакиваются корни перед посадкой или препарат вливается непосредственно в лунку (5 миллилитров на одно растение).

Полив осуществляется 10% (100 миллилитров на десять литров воды), а опрыскивание 20–30% раствором препарата.

В зависимости от развития болезней опрыскивание овощей можно повторять каждые десять-двадцать дней с момента появления двух настоящих листьев. Плодово-ягодные культуры и виноградники опрыскиваются после появления почек.

Препарат используют для получения органических удобрений. На тонну компоста нужно вылить 100 литров воды, в которой было растворено 6 литров «Триходермина». Перегной будет готов через два месяца.

Для рекультивации почв поля и огороды также обрабатываются этим препаратом (на 400 литров воды его берётся 8 литров). Обработка производится за две недели до вспашки. Вся оставшаяся солома или трава будет успешно переработана триходермами.

На один гектар в среднем получится четыре тонны экологически чистых органических удобрений.

Отзывы

“Вносили препарат непосредственно в почву перед посевом сосны в питомнике. Сеянцы взошли дружно. Удалось избежать полегания ростков.”

“Применяла под глоксинии. Осенью клубни пересадила в обработанную землю. Обычно они гниют зимой. А у меня целыми остались! Весной стали быстро расти. Очень довольна!”

“Можно не препарат сам покупать, а живые грибки. Если ими заразить землю в теплице, урожаи повысятся. И деньги потом не нужно тратить на покупку растворов, таблеток или порошка каждый год.”

Если вы хотите получить богатый урожай смородины и крыжовника, то вам нужно знать, как защитить свои растения от стеклянницы. Для этого читайте нашу статью.

Гусеницы пестрянки наносят значительный ущерб фруктовым садам. Узнайте, как побороть этого вредителя, прочитав статью по https://stopvreditel.ru/rastenij/selxoz/pestrjanka.html ссылке.

Цена препарата

Средняя стоимость – 550 рублей (упаковка сухого порошка на 50 г), 240 рублей (1 литр жидкого препарата). Упаковки сухого препарата хватает на обработку с помощью бака для опрыскивания одного гектара земли.

аллергия у малого. Зостерин-ультра??

Примерно 10 дней назад у сына появилась сыпь на лице, потом пошла по телу — шея и грудь. Я грешу на то, что в процессе приготовления торта на заказ попробовала кусочек бисквита маленький и крема сливки-сыр, еще прочитала что Саб-Симплекс может давать аллергию, его тоже давали недолго. В остальном диета строгая — каши, немного картошки, кабачок, индейка, кролик, печенье Мария. Пьем фенистил и купаемся в сборе № 28, как невролог сказала, он и противоаллергенный.

Вопрос в другом — в поликлинике в очереди посоветовали Зостерин Ультра попробовать, кровь почистить от аллергена и посмотреть, на что же это может быть. кто-нибудь давал его? как результаты? спрошу у педиатра сегодня насчет него, но и мнения интересны.

Грибы рода Trichoderma Pers.: FR.: Таксономия, географическое распространение и экологические особенности тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.24, кандидат биологических наук Александрова, Алина Витальевна

  • Специальность ВАК РФ 03.00.24
  • Количество страниц 227

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Александрова, Алина Витальевна

2. Обзор систематики грибов рода Тпскойегта РегБ.: Рг., их экологических и физиологических особенностей, а также их практического применения. (Обзор литературы)

2.1. Систематика и таксономия рода Тпскойегта РегБ.: Рг.

2.1.1. История и развитие концепции рода и видов Тг1сЬос1егта.

2.1.2. Современное состояние системы рода Тпскойегта и перспективы ее развития.

2.2. Географическое распространение грибов рода Тгккос1егта и их экологические особенности.

2.2.1. Распространение видов Тпскойегта в природе.

2.2.2. Роль видов рода Тпскойегта в сообществах организмов.

2.2.3. Роль видов рода Тпскойегта в круговороте веществ и преобразовании антропогенных загрязнении окружающей среды.

2.3. Физиологические и генетические особенности грибов рода Тпскойегта.

2.4. Ферменты и биологически активные вещества грибов рода Тг1сИос1егта.

2.5. Использование грибов рода Тпскойегта в защите растений.

2.6. Значение грибов рода ТпсИос1егта как паразита базидиомицетов.

2.7. Опасные свойства грибов рода ТпсИос1егта для здоровья человека.

3. Объем материала и методика исследований.

3.1. Видовое разнообразие и распространение грибов рода Тг1скос1егта.

3.2. Сравнение видового состава грибов рода Тпскойегта в почве и на древесине в различных типах леса Тверской области.

3.3. Оценка влияния Тпскойегта каггхапит на почвенную микобиоту.

4. Анализ видового разнообразия и географического распространения видов рода ТпсЬойегта на территории России и сопредельных стран.

4.1. Анализ видового разнообразия видов рода Тпскойегта.

4.2. Анализ географического распространения видов рода Тггскос1егта

4.3. Распространение видов рода Тг1сИос1егта на различных субстратах.

4.4. Сравнительный анализ видового состава грибов рода Тггскос^егта на различных субстратах на территории Звенигородской биостанции МГУ.

4.5. Сравнительный анализ видового состава грибов рода ТпсИос1егта на различных субстратах в окрестностях деревни Крутицы Тверской области.

4.6. Сравнительный анализ видового состава грибов рода Тггскойегта в вулканических почвах кальдеры вулкана Узон и Долины Гейзеров на Камчатке.

4.7. Сравнение популяций наиболее распространенных видов рода Тгк1юс1егта из различных регионов.

5. Характеристика рода Trichoderma Pers.: Fr.

5.1. Общая характеристика рода.

5.2. Ключ для определения видов рода Trichoderma Pers.: Fr.

5.3. Описания видов рода Trichoderma

5.3.1. Т. viride Pers.: Fr.

5.3.2. T. asperelhtm Samuels, Lieckfeit et Nirenberg.

5.3.3. T. koningii Oudem.

5.3.4. T. atroviride Karsten.

5.3.5. T. aareoviride Rifai

5.3.6. T. harzianum Rifai

5.3.7. T. mimitisporiim Bisset

5.3.8. T. hamatum (Bon.) Bain.

5.3.9. T. croceum Bissett

5.3.10. T. fertile Bissett

5.3.11. T. longipilis Bissett.

5.3.12. T. oblongisporum Bissett

5.3.13. T. spirale Bissett

5.3.14. T. strictipilis Bissett

5.3.15. T. strigosum Bissett

5.3.16. T. tomentosum Bissell.

5.3.17. T. virens (Miller, Giddens et Foster) von Arx

5.3.18. T. crassum Bissett.

5.3.19. T. polysporum (Link: Fr.) Rifai.

5.3.20. T. citrinoviride Bissett.

5.3.21. T. longibrachiatum Rifai.

5.3.22. T. saturnisporam Hammill.

5.3.23. Trichoderma sp. 1 (106).

5.3.24. Trichoderma sp. 2 (436).

6. Грибы рода Hypocrea Fr., имеющих анаморфу, относящуюся к роду Trichoderma, в южно-таежных лесах Европейской части России.

6.1. Общая характеристика рода Hypocrea.

6.2. Распространение видов рода Hypocrea, имеющих анаморфу, относящуюся к роду Trichoderma, в исследованных областях.

6.3. Описания обнаруженных видов Hypocrea.

6.3.1. H. rufa Pers.: Fr.

6.3.2. H. schweinitzii (Fr.) Saccardo.

6.3.3. Hypocrea sp. (образец № 436)

7. Влияние гриба T. harzianum на почвенные микромицеты.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Микология», 03.00.24 шифр ВАК

Экология грибов рода Trichoderma (Pers.:Fr.) бассейна реки Енисей, их биологические свойства и практическое использование 2012 год, доктор биологических наук Садыкова, Вера Сергеевна

Биологическое разнообразие видов рода Trichoderma (Fungi, Ascomycetes, Hypocreales) и их роль в функционировании микробиоты и защите растений в агроценозах различных почвенно-климатических зон на территории Республики Татарстан 2006 год, доктор биологических наук Алимова, Фарида Кашифовна

Эколого-биологическое обоснование скрининга грибов рода Trichoderma для получения и использования биопрепаратов на растительных субстратах 2006 год, кандидат биологических наук Заика, Надежда Алексеевна

Эколого-биологическая роль грибов рода Тrichoderma в различных биоценозах Средней Сибири 2000 год, кандидат биологических наук Прудникова, Светлана Владиславовна

Влияние Trichoderma почв Египта и Республики Татарстан на отдельные параметры живых систем 2011 год, кандидат биологических наук Атеф Абдельмохсен Абдельрахман Ахмед

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Грибы рода Trichoderma Pers.: FR.: Таксономия, географическое распространение и экологические особенности»

В последние годы грибы находят все большее применение в самых разных областях деятельности человека. Однако, на данный момент хорошо изучены свойства только небольшого количества известных видов. В связи с этим необходимо как детальное изучение биологии используемых человеком видов, так и поиск новых полезных свойств других грибов. Несмотря на то, что ферменты грибов давно уже широко используются в промышленности, постоянно обнаруживаются новые свойства известных ферментов а так же выделяются новые продуценты. (Archer, Peberdy, 1997). Грибы рода Trichoderma в настоящее время находят, пожалуй, наиболее разнообразное применение в промышленности и сельском хозяйстве.

Изучение видов Trichoderma представляет большой практический и теоретический интерес в связи с их использованием в деятельности человека. Широкое применение этих грибов требует детального изучения их экологических особенностей, видового разнообразия, биотопического распределения, конкурентных взаимоотношений и географического распространения.

Грибы этого рода широко распространены в природе и встречаются на многих субстратах, но чаще в почве и на мертвой древесине. Они играют ключевую роль в сообществе микроорганизмов (Салина, 1981; Smith, 1995; Великанов, 1997) и применяются во многих областях человеческой деятельности. Виды этого рода используются для получения целлюлозолитических и некоторых других ферментов, для биологического контроля болезней растений и биологической очистке почвы (Samuels, 1996).

В последние годы систематика этого таксона вызывает много споров, вызванных как пересмотром концепции рода, так и описанием большого числа новых видов. Параллельно с морфологическим подходом, в последнее время активно развиваются различные макромолекулярные методы систематики этого рода, которые позволяют доказать связь анаморфы с телеоморфой и дают новый подход к системе этого рода. На данный момент описано около 200 видов Нуросгеа, и около половины из них имеет анаморфу относящуюся к роду Trichoderma. (Samuels, 1996; Rossman, Samuels, 1999). Из этого можно предположить, что существует, по крайней мере, 100 естественных видов Trichoderma, но возможно их еще больше, поскольку клоны потерявшие способность к половому размножению могут эволюционировать самостоятельно (Горленко, 1979; Samuels, 1996; Дьяков, 1993, 1999).

Представление о таксономии этого рода не соответствует все более расширяющемуся количеству сторон использования видов Trichoderma человеком. Успешная работа биотехнологов, фитопатологов и медицинского персонала с видами этого рода невозможна без их точной идентификации (Samuels, 1996; Esposito, Dasilva, 1998). Классификация грибов используемых для биоконтроля и биотехнологии очень важна в практическом отношении. Но создание приемлемой системы для рода Trichoderma затруднено неясностью морфологических признаков и не всегда известной связью с телеоморфой. Накопление макромолекулярных данных помогает в решении этих проблем, но пока еще остается много неясных вопросов (Samson, 1995).

В результате современных исследований многие из агрегатов видов, описанных Rifai (1969), разбиты на отдельные виды и на данный момент известно 29 видов рода Trichoderma. Но определение их довольно сложно в первую очередь из-за отсутствия единого ключа ко всему роду, а не только к отдельным его группам (Bissett, 1991 b; Samuels et al., 1998; Samuels et all., 1999).

Грибы рода Trichoderma являются активными целлюлозолитиками и хитинолитиками, поэтому их используют для получения ферментов, разрушающих хитин, целлюлозу, лигнин и пектин, которые применяются в целлюлозно-бумажной, пищевой, топливной промышленности, при производстве спирта, а также в биохимических и молекулярно-биологических исследованиях (Archer, Peberdy, 1997). Их также используют для производства кормового белка. Кроме того, из них получают биологически активные вещества, в том числе некоторые антибиотики и токсины (пептаиболы, циклоспорины) (Samuels, 1996; Ghisalberti, Sivasithamparam, 1991).

Способность разрушать хлорорганические вещества и различные пестициды, гербициды и инсектициды, а также полиэтилен и некоторые пластмассы открывают возможность для использования с помощью биоочистки загрязненных почв и в переработке отходов (Esposito, Dasilva, 1998).

Грибы этого рода являются удобным объектом для биохимических физиологических и генетических исследований. Физиология этого рода активно изучается на примере вида Т. reesei E.G. Simmons, который является модельным объектом для биохимических, генетических и физиологических исследований.

Кроме положительных, с точки зрения человека свойств, она имеет и несколько отрицательных. Так Trichoderma наносит сильный ущерб при коммерческом выращивании грибов, таких как шампиньоны, шии-таке и вешенка, развиваясь на субстрате или поражая плодовые тела (Castle et al., 1998; Tokimoto et al., 1998; Muthumeenakshi et al., 1998).

В ряде случаев Trichoderma может представлять опасность для здоровья неловка. Так, в недавнее время выяснилось, что она вызывает глубокие микозы у людей с подавленным иммунитетом, в основном у пациентов, перенесших пересадку органов (Munoz et al., 1997). А также может быть потенциальным аллергеном, особенно для работников лесопилок и деревообрабатывающих комбинатов (Halpin et al., 1994).

Грибы этого рода образуют одни из наиболее сильных известных грибных токсинов, таких как виридин, глиотоксин, триховиридин, дермадин, аламетицин, трихополины и могут являться причиной токсикозов почв.

Способность подавлять рост и развитие других грибов, а также паразитировать на них, поражая гифы и склероции, вместе с неспособностью поражать живые растения, используется в сельском хозяйстве для биологического контроля паразитов растений. Препараты на основе видов рода Trichoderma используются для защиты растений от широкого круга болезней, вызванных грибами, а также почвенных нематод, как в теплицах, так и в открытом грунте, а также для стимуляции роста и развития растений. Сейчас существует несколько коммерческих препаратов на основе разных видов рода Trichoderma, и активно разрабатываются новые преимущественно комплексные средства защиты растений (Сидорова, 1980; Chet, Inbar, 1994; Великанов, 1997). В нашей стране широко применяется препарат «Триходермин» на основе активных штаммов Trichoderma, получаемый путем культивирования этих грибов на различных растительных отходах, как в биологических лабораториях, так и непосредственно в хозяйствах (Федоринчик и др., 1974; Бадяй, 1984).

Химический метод защиты растений давно критикуется как небезопасный для окружающей среды. Напротив, биологический метод считается экологически чистым (Великанов, Сидорова, 1988; Baker, 1991; Lynch, Crook, 1992; Chet, Inbar, 1994). Однако интродукция в сообщество сильных неспецифических конкурентов влияет не только на паразитов растений, но и на организмы не мишени, что может привести к нарушению равновесия в биоценозе. При использовании Trichoderma для защиты растений не было исследовано ее влияние на сапротрофную почвенную биоту.

Исследования, посвященные этой теме, отсутствуют, хотя существуют указания на то, что каждый микробиологический препарат должен проходить такую же длительную проверку экологической безопасности, как и химические средства защиты растений (Филиппов, Кузнецова, 1994; Cook et al., 1996). В связи с этим одной из целей нашей работы было определить влияние интродуцированного в почву антагониста на микобиоту на примере активного штамма Trichoderma harziamim Rifai, использующегося для защиты картофеля от Rhizoctonia solani Kühn.

Хотя работ по применению видов Trichoderma довольно много, их изученность в природе явно недостаточна. Видовой состав и распространение этого рода гифомицетов в России изучены не полно. Г.Ш. Сейкетов (1982), занимаясь этим вопросом, использовал систему, в которой Trichoderma делится только на пять видов. Другие исследователи пользовались более современной и общепринятой системой, введенной индонезийским микологом Rifai (1969), но их исследования были ограничены определенной территорией (Шарова, 1983; Салина, 1988; Курини, 1991). Кроме того, и эта система на данный момент устарела, так как сейчас описаны новые виды, большинство из которых встречаются довольно широко (Turovzi et al., 1994; Samuels et all., 1999). Нечеткая морфология этого рода и отсутствие доступных ключей затрудняет определение видов, в связи с этим их распространение в России не изучалось, что и представляет новизну данной работы.

Вместе с тем, существует путаница с названиями из-за того, что в разных работах в основном по практическому применению использовались разные таксономические системы. Это затрудняет исследования этого рода, так как не всегда ясно о каком виде идет речь (Шарова, 1981; Сидорова, 1980).

Таким образом, ОДНОЙ ЦЕЛЬЮ настоящей работы стало изучение разнообразия и распространения грибов рода Trichoderma в нашей стране с учетом новой систематической концепции. ДРУГОЙ ЦЕЛЬЮ была оценка влияния Trichoderma на сапротрофную почвенную микобиоту при ее интродукции в агроэкосистему.

Для достижения этих целей нами были поставлены следующие ЗАДАЧИ:

1. Изучить видовое разнообразие рода Trichoderma на территории России, принимая во внимание описанные новых видов;

2. Проанализировать географическое распространение видов этого рода в различных географических областях;

3. Сравнить морфологию изолятов, которые были получены из разных географических регионов;

4. Оценить значение различных морфологических признаков для идентификации видов рода Trichoderma;

5. Составить ключ для определения всех описанных на данный момент видов;

6. Найти телеоморфные стадии некоторых видов рода Trichoderma в природе и посмотреть их распространение; микромицетов, не являющихся :шю равновесия в сообществе цессов. и ключей для определения всех

7. Составить коллекцию, которая в последствии может быть использована для поиска активных штаммов для биоконтроля и продуцентов биологически активных веществ;

8. Оценить выживаемость Т. Ьагггапит в окультуренной почве опытного поля Звенигородской биостанции МГУ.

9. Определить влияние широко используемого для защиты растений вида Т. Иагг1апит на сапротрофную почвенную микобиоту.

Научная новизна результатов исследования состоит в подробном изучении распространения видов рода Тпскоёегта по территории России, обнаружении 14 видов ранее не отмеченных для России, выявлении совершенной стадии трех видов, ранее не описанных на территории России. Впервые показано, что риологические методы защиты растений могут иметь отрицательные экологически^ последствия: интродукция антагониста приводит к изменению структуры комплекса мишенью биоконтроля, что может привести к наруше: почвенных организмов, а также почвообразовательных прс ]

Практическое значение работы состоит в составлена ] описанных на данный момент видов. Так же собрана большая коллекции изолятов (726), которые могут быть использованы в практических це;ях (пять штаммов переданы в коллекцию промышленных микроорганизмов при Институте генетики и селекции промышленных микроорганизмов).

В основу работы положен материал, собранный в период с 1994 по 1999 годы собранный в 24 регионах России и некоторых других государств.

Работа выполнена на кафедре микологии и альгологии биологического факультета МГУ. Полевой эксперимент проведен на Звенигородской биостанции МГУ.

Я сердечно благодарю сотрудников, студентов и аспирантов кафедры микологии и альгологии МГУ, оказавших мне неоценимую помощь в сборе, материала. Особую благодарность автор выражает Л.Л. Великанову и И.И. Сидоровой, под непосредственным руководством которых была выполнена данная работа.

Автор выражает глубокую признательность сотрудникам лаборатории сенсорных систем ИППИ РАН за предоставленную возможность обработки образцов на микроскопе и помощь в подготовке иллюстративного материала.

Работа выполнена при частичной финансовой поддержке гранта РФФИ (проект № 98-04-488813).

Похожие диссертационные работы по специальности «Микология», 03.00.24 шифр ВАК

Биотические связи микромицетов чернозема выщелоченного в агроэкосистемах лесостепи 2009 год, кандидат биологических наук Сенчакова, Татьяна Юрьевна

Биоэкологические особенности гиперпаразитных грибов и их значение в ограничении численности корневых гнилей зерновых культур 2005 год, кандидат биологических наук Балбашевская, Наталья Александровна

Научное обоснование и практическая реализация технологии создания грибных препаратов для защиты растений от болезней 2006 год, доктор биологических наук Коломбет, Любовь Васильевна

Фитопатогенные микромицеты сеянцев хвойных в Средней Сибири: Видовой состав, экология, биологический контроль 2002 год, доктор биологических наук Громовых, Татьяна Ильинична

Биологическая активность выщелоченных черноземов Юго-Востока республики Татарстан 2008 год, кандидат биологических наук Тазетдинова, Диана Ирековна

Заключение диссертации по теме «Микология», Александрова, Алина Витальевна

1. В результате исследования на территории России и сопредельных государств нами было обнаружено 24 вида из рода Trichoderma. 14 из них ранее не были отмечены в России.

2. На Дальнем востоке чаще встречались виды: Т. viride, Т. harzianum, Т. virens, а также виды группы Т. hamatum aggr. sensu Rifai. В центральной части России преобладают: Т. viride, Т. citrinoviride, Т. polysporiim, виды группы Т. hamatum aggr. и Т. atroviride. В южных областях чаще выделялись Т. asperellum, Т. koningii, Т. longibrachiatum, Т. atroviride и Т. harzianum.

3. Разные виды предпочитают разные субстраты, так Т. viride вместе с телеоморфой Hypocrea rufa, а также Т. citrinoviride вместе с Я schweinitzii предпочитают древесину. Напротив виды группы Т. hamatum agrr., Т. koningii, Т. virens, Т. asperellum и Т. aureoviride чаше встречаются в почве. Т. saturnisporum также обнаружена в почве. Виды Т. atroviride, Т. polysporum и Т. longibrachiatum предпочитали почву и плодовые тела грибов, причем в почве они встречались немного чаще. А Т. harzianum обитала преимущественно на плодовых телах грибов.

4. Виды рода Trichoderma способны жить практически на любой древесине, но наибольшее количество изолятов обнаружено на древесине березы и ольхи. Древесину или кору других пород деревьев грибы этого рода заселяют реже.

5. В различных типах леса обилие грибов рода Trichoderma в почве, как правило, не связано с численностью и видовым составом этого рода на древесине. Так в различных типах ельников Тверской области Trichoderma на древесине встречается крайне редко, в то время как в почве этот род широко представлен и обилен. В осиннике и особенно ольшанике, наоборот, большее разнообразие и обилие видов представлено на древесине, чем в почве.

6. На Камчатке в вулканических слоисто-пепловых почвах частота встречаемости видов рода Trichoderma довольно высока. На участках, не измененных поствулканической и гидротермальной деятельностью, встречаются виды характерные для этой климатической зоны, а в пределах термальных площадок обитают виды характерные для более южных регионов.

7. Популяции наиболее частых и изменчивых видов: Т. viride, Т. citrinoviride и Т. koningii из географически отдаленных регионов имеют достоверные отличия в размере конидий. У Т. harzianum отличается только популяция из Томской области. Изоляты видов Т. hamatum и Т. polysporum из Тверской и Московской области достоверно не отличаются.

8. Найдены три вида рода Нуросгеа, имеющие анаморфы относящиеся к роду Trichoderma.

9. Для идентификации грибов рода Trichoderma важен комплекс всех морфологических признаков, причем наиболее устойчивыми являются характеристики конидий и строение макроконидиеносцев.

10. При искусственном внесении Т. harzianum сохранялась в почве в течение двух лет и оказывала заметное подавляющее влияние на Rhizoctonia solani. Таким образом, Т. harzianum может быть использована в качестве агента биоконтроля.

11. Интродукция Trichoderma приводит к изменению структуры комплекса почвенных микромицетов и сокращению их видового разнообразия.

Проделанная работа подтвердила широкое распространение видов рода Trichoderma в почве и на других субстратах во всех географических зонах России. Обнаружено большинство описанных на данный момент видов — 22 из 29. Два не идентифицированных, возможно будут описаны как новые, если дальнейшие исследования с использованием макромолекулярных методов не покажут их близость к уже описанным видам.

На исследованной территории не было встречено 7 из всех известных видов. Распространение трех из них: Т. pseudokoningii, Т. reesei и Т. konilangbra, по-видимому, ограничено австралийским регионом или тропическими областями (Samuels et al., 1998). Другие четыре, по литературным данным, встречаются крайне редко и, возможно, не были выявлены.

Т. pilluliferum, описанная как анаморфа Hypocrea pillulifera (Webster, Rifai, 1968), упоминается в работах, посвященных видовому разнообразию грибов крайне редко (Sampo et al., 1997). Возможно, была находка этого вида на Звенигородской биостанции (Великанов и др., 1999), но, к сожалению, материала подтверждающего это не сохранилось. В крупных коллекциях грибов изолятов этого гриба тоже не много. Так, например, Bissett (1991b) не смог дать свое описание этого вида, так как хранящиеся в коллекции культуры потеряли способность к спороношению, а новых находок в его распоряжении не было. Т. ghanense, Т. fasciculatum и Т. flavofitscum тоже редко упоминаются в работах по распространению грибов.

Чаще всего встречались Т. viride и Т. citrinoviride. Чуть реже -Т. hamatum, Т. koningii и Т. harzianum. Еще немного реже — Т. longibrachiatum, Т. atroviride, Т. asperellum и Т. polysporum, но их все равно можно отнести к частым видам. Таким образом большая часть описанных Rifai (1969) видов, кроме трех: Т. aureoviride и Т. pilluliferum, встречаются часто. Широко распространенный вид Т. citrinoviride, описанный относительно недавно (Bissett, 1984), по-видимому, идентифицировался как Т. pseudokoningii или Т. koningii по системе Rifai, что подтверждается переопределением хранящегося в коллекции материала (Kuhls et al., 1997).

В нашей работе подтверждено указание некоторых авторов, что Т. viride, Т. hamatum aggr Т. citrinoviride и Т. polysporum, чаше встречаются в регионах с умеренным климатом, а Т. longibrachiatum в районах с более аридным. Т. harzianum, Т. virens и Т. koningii встречаются везде (Danielson, Daney, 1973; Wicklow, Whittingham,

1978; Samuels, et al., 1998). Однако из этого правила полно исключений и, видимо, определяющее значение для распространения этих грибов имеют конкретные условия микроместообитания.

Отношение разных видов к субстрату тоже не одинаковое, так Т. viride вместе с телеоморфой Hypocrea rufa, а также Т. citrinoviride вместе с Н. schweinitzii предпочитают древесину. Напротив виды группы Т. hamatum aggr., Т. koningii, Т. virens, Т. asperellum и Т. aureoviride чаше встречаются в почве. А Т. harzianum предпочитает преимущественно плодовые тела грибов. В условиях нашей климатической зоны виды рода Trichoderma отдают предпочтение древесине лиственных пород, особенно березы и ольхи.

Удаленные географически популяции наиболее распространенных и изменчивых видов показали достоверные отличия друг от друга по среднему размеру конидий. Этот признак был выбран для сравнения, так как он наиболее устойчив и почти не зависит от условий выращивания и состояния культуры.

В центре европейской части России найдена телеоморфная стадия Т. viride -Hypocrea rufa, и Т. citrinoviride — Н. schweinitzii, а также не идентифицированный вид Hypocrea sp., с анаморфой относящейся к Trichoderma секции Pachybasium и близкой к Т. harzianum. Оказалось, что формирование совершенной стадии этими видами рода Trichoderma в природе, не такое уж редкое явление. Однако в культуре телеоморфная стадия была получена только для тропического вида Н. poronioidea (Rossman, 1996).

На основе собранного материала и литературных данных составлен ключ для определения видов этого рода. А также показано, что размер и форма спор и строение макроконидиеносцев наиболее значимые признаки видов рода Trichoderma, но при определении необходимо учитывать весь комплекс признаков.

При оценке влияния интродуцента, используемого для защиты растений, на сапротрофные микромицеты, не являющиеся мишенью биоконтроля, нами показано, что Т. harzianum может сохраняться в почве до двух лет и в течение этого срока оказывает заметное влияние на почвенную биоту. В этом эксперименте штамм выживал несколько дольше, чем описано в других работах (Papavizas, 1985). Возможно, это связано с тем, что виды рода Trichoderma широко распространены в почвах Подмосковья и условия для них благоприятны (Великанов и др., 1999).

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Александрова, Алина Витальевна, 2000 год

1. Алимова Ф.К., Захарова Н.Г., Егоров С.Ю., Лещинская И.Б., Литвинова Л.И.

2. Кинетика Trichoderma harzianum Rifai Г-432 в тепличном грунте. // Микология и фитопатология, 1996. Т.30, вып.З. С. 48-54

3. Бондарцев A.C. Шкала цветов. (Пособие для биологов при научных и научно прикладных исследованиях). М.: Издательство АН СССР, 1954. 28с.

4. Бегляров Г.А., Ущеков А.Т. Система биологической защиты огурца от комплекса вредителей и болезней в теплицах // Информ. бюл. ВПС МОББ Междунар. орг. по биол. борьбе с вред, животными и растениями. Восточнопалеаркт. секция, 1988. Т. 23 с. 19-23

5. Билай В.И. Микроскопические грибы продуценты антибиотиков. Киев, 1961, — 292 с.

6. Бондренко Н.В. Биологическая защита растений. М. Агропромизадт. 1986, 273 с. Великанов Л.Л., Сидорова И.И. Экологические проблемы защиты растений от болезней. Итоги науки и техники. Сер. Защита растений. Т. 6. М.: ВИНИТИ, 1988. 143 с.

7. Великанов Л.Л., Сидорова И.И., Успенская Г.Д. Полевая практика по экологиигрибов и лишайников. М.: МГУ, 1980. 110 с.

8. Великанов Л.Л. Основные закономерности формирования группировок грибов впочвах нарушенных и ненарушенных местообитаний. // В кн.: Изучение грибов в биоценозах. Ташкент, 1985. 29-30 с.

9. Великанов Л.Л Роль грибов в формировании мико- и микробиоты почв естественныхи нарушенных биоценозов и агроценозов. Дис. д. б. н. М.: 1997. 547 с.

10. Гаузе Г.Ф., Терехова Л.Н., Максимова Т.С. и др. Изыскание новых антибиотиков из группы циклоспоринов. // Антибиотики. 1983. Т. 28, вып. 4. С. 243-245.

11. Горбушина A.A. Повреждение скульптур и сооружений из мрамора в Херсоне. // Микология и фитопатология, 1996; Т.30,вып.4 С 23 27.

12. Горленко M.B. Состояние и перспективы биологического метода защиты растений от заболеваний // Ж. Общ. биол., 1979. Т. 40, N 5о 0 3, 325-331 с.

13. Горленко М.В. Состояние и перспективы биологического метода защиты растений от заболеваний // Ж. Общ. биол. 1979. Т.40, N3. 325-331с.

14. Горленко М.В. Эволюция паразитизма фитопатогенных грибов // Микол. и фитоптол. 1976.Т. 10, вып. 1. 5-10 с.

15. Гришкан И.Б. Почвенные микромицеты ольховников в бассейне верховий Колымы // Микология и фитопатология, 1995. Т.29, вып.2. 1-6 с.

16. Громовых Т.Н., Гукасян В.М., Голованова Т.Н., Шмарловская C.B. Trichoderma harzianum Rifai aggr. как фактор повышения устойчивости томатов к возбудителям корневой гнили // Микология и фитопатология, 1998. Т.32, вып.2 С. 73-78.

17. Дьяков Ю. Т Системы размножения грибов и их эволюция.// Микол. и фитопатол. 1999. Т. 33, №3. С.137-?.

18. Дьяков Ю. Т. Критерии биологического вида у грибов (с обзором таксономической структуры ризоктоние подобных грибов). // Микол. и фитопатол. 1993. Т. 27, № 6. С.68-82.

19. Егорова J1. Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. JL: Наука, 1986. 191 с.

20. Егураздова A.C., Каверзнева Г.Д. Современные направления биологической борьбы с болезнями сельскохозяйственных культур. М.,1979, 202 с.

21. Звягинцев Д.Г. Некоторые концепции строения и функционировния комплексов микрооргнизмов //Вестн. МГУ, сер. 17, почв., 1978, С. 97-102

22. Звягинцев Д.Г. (ред.) Методы почвенной микробиологии и биохимии. -М.: Из-во МГУ, 1980,-224 с.

23. Камышко О.П. Внутривидовая изменчивость Trichoderma lignorum (Tode) Harz. // Бот.ж., 1961. T.46, N.5, C.44-65.

24. Кириленко Т. С. Определитель почвенных сумчатых грибов. Киев: Наук. Думка. 1978.263 с.

25. Кирцидели И.Ю. Почвенные микромицеты горных тундр Хибин (Кольский полуостров) Микология и фитопатология, 1999; Т.ЗЗ, вып.6. С. 368-391.

26. Коломникова В.И., Башмаков P.A., Новиков А.Г. Взаимодействия грибов Helminthosporium sativum и Trichoderma lignorum на фоне нитрата кальция // Научн. техн. бюлл. Сиб. НИИ химизации с/х. 1977. В. 19. С. 42-44.

27. Комарова М.С. Применение триходермина в борьбе с болезнями огурцов в закрытом грунте // Биол. метод защиты раст., Тез.докл. научн.-произв. конф. -Минск, 1984. С. 26-27.

28. Комышко О.П. Внутривидовая изменчивость Trichoderma lignorum (Tode) Harz. // Бот.ж., 1961. T.46, N.5.C. 44-65.

29. Крапивина И.Г., Сизова Т.П., Полякова JI.A. О диагностических признаках видов рода Trichoderma Fr. // Микология и фитопатология, 1973. Т.7, N.3. С.233-234.

30. Крапивина И.Г., Сизова Т.П., Полякова J1.A. О диагностических признаках видов рода Trichoderma Fr. // Микология и фитопатология, 1973. Т.7, N.3. С.233-234.

31. Курини С. Грибы рода Trichoderma Pers: Fr., их биотические связи и проблемы интродукции в почвы. Автореферат дис. к. б. н. М., 1991. 26 с.

32. Курицина Д. С. Сизова Т.П. Новые виды грибов из рода Sporotrichum Fr. и Trichoderma Fr., изолированных с произведений изобразительного искусства. // Микология и фитопатология, 1967. Т.1, N 4. С.342-344.

33. Курсанов Л.Н., Шкляр Т.Н. Сравнительное изучение микофлоры московских и батумских почв. // Бголл. МОИП, отд. биол., новая серия, 1938. 47, N.3. С.

34. Кустова А.И., Кошкан А.П. и др. Результаты многолетнего изучения эффективности биометода защиты огурцов от болезней // Биол. метод борьбы с вредит, и болезнями растений в закрытом грунте. М.1978. С.161-170.

35. Кучвальский J1.C., Доровская Ю.Л. Изготовление и применение биопрепарата Trichoderma Гомельской областной биолабораторией // Биол. методы защиты раст., Тез.докл. научн.-произв. конф.,-Минск, 1984. С.24-25.

36. Литвинов М.А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов. Л.: Наука, 1969. 120 с.

37. Литвинов М.А. Определитель почвенных микроскопических грибов. -Л.: Наука 1967.- 302 с.

38. Мегарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир, 1992. 181 с.

39. Мирчинк Т.Г. Методические подходы к изучению грибов-микромицетов в почве. // В кн.: Методы выделения и идентификации почвенных микроорганизмов-биодеструкторов. Вильнюс, 1982. С.96-98.

40. Мирчинк Т.Г. Почвенная микология. М.:Из-во МГУ, 1976, — 206 с.

41. Мирчинк Т.Г., Степанова J1.H., Марфенина O.E., Озерская С.М. Характеристика комплексов грибов некоторых почвенных типов Советского Союза // Вест. МГУ. Почвоведение. 1981. №1 С. 19-41.

42. Мишустин E.H., Мирзуева В.А. Микрофлора почв Севера СССР. // В кн.: Микрофлора почв северной части СССР,- М., 1966. С.55-65.

43. Мишустин E.H., Пушкинская О.Н. Эколого-географические закономерности в распространении почвенных микроскопических грибов. // Изв. АНСССР, сер.биол.,1960. N5, С.87-92.

44. Мусатова JIM., Кирик H.H. Применение штаммов гриба-антагониста Trichoderma lignorum Harz, против корневой гнили пшеницы // Научн. труды укр. с/х академии.-1977, Вып.200, С.106-109.

45. Новикова И.И.; Литвиненко А.И.; Калько Г.В. Влияние новых биопрепаратов, созданных на основе штаммов микробов-антагонистов, на комплекс возбудителей корневых гнилей огурца // Микология и фитопатология, 1995. Т.29, вып. 5-6 С. 46 -53.

46. Новогрудский Д.М. Метод исследования микрофлоры отдельных почвенных чстиц. //Вестн. АН Каз. ССР, сер. биол.,-1948 6,-N 5 6, С. 710-731.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.

Научная электронная библиотека disserCat — современная наука РФ, статьи, диссертационные исследования, научная литература, тексты авторефератов диссертаций.

Перспективы использования отходов переработки сои и гриба рода Trichoderma для получения ферментной кормовой добавки

Дата публикации: 02.03.2015 2015-03-02

Статья просмотрена: 350 раз

Библиографическое описание:

Кощаева О. В., Степовой А. В., Борисенко В. В., Николаенко В. И. Перспективы использования отходов переработки сои и гриба рода Trichoderma для получения ферментной кормовой добавки // Молодой ученый. — 2015. — №5.1. — С. 14-17. — URL https://moluch.ru/archive/85/16055/ (дата обращения: 20.10.2020).

Промышленное птицеводство – динамично развивающаяся отрасль. Согласно программе «Развитие птицеводства в Российской Федерации» объем производства мяса птицы к 2020 г. должен быть увеличен до 9,5 млн т. Этого планируется достичь не только за счет увеличения ассортимента птицеводческой продукции, но и расширения кормовой базы нетрадиционными и при этом дешевыми кормовыми средствами. В качестве таких средств выделяют препараты и добавки ферментативной направленности, повышающие пищевую полноценность кормов [2; 5; 7; 10; 13; 16; 18; 20; 22; 23; 26; 27].

В последнее время большой интерес представляют ферментные кормовые добавки на основе гриба рода Trichoderma, так как он быстро растет, продуцирует разнообразные ферменты (целлюлазы, лигнин-дегидрогеназы, ксиланазы и др.), что позволяет использовать экономически выгодные компоненты, не жертвуя при этом питательной ценностью рациона. В связи с тем, что гриб рода Trichoderma способен разрастаться практически на любом субстрате, на сегодняшний день актуальным является использование отходов переработки сои, в качестве основного носителя для твердофазной ферментации гриба с целью получения кормовых белково-ферментных добавок [1; 3; 11; 15; 19; 24; 28].

Окара, как основной продукт переработки сои, содержит много клетчатки, белка, витаминов, макро- и микроэлементов. Её пищевая ценность определяется белковой составляющей, комплексом полиненасыщенных жирных кислот и олигосахаридами. Научные исследования показали наличие в соевых олигосахаридах бифидогенных свойств, что положительно влияет на микрофлору кишечного тракта [4; 6; 8; 9; 12; 14; 17; 21; 25].

Таким образом, использование отходов переработки сои в качестве субстрата для твердофазной ферментации гриба рода Trichoderma с целью получения белково-ферментных кормовых добавок является перспективным направлением.

Материалы и методы. Работа проводилась в научно-исследовательской лаборатории кафедры биотехнологии, биохимии и биофизики ФГБОУ ВПО «Кубанский ГАУ», целью которой являлся подбор наиболее продуктивного вида гриба рода Trichoderma и оптимальной питательной среды на основе отходов переработки сои для получения белково-ферментной кормовой добавки. Для подбора гриба рода Trichoderma использовали 3 вида: Trichoderma viride, Trichoderma lignorum и Trichoderma harsianum. В качестве носителя для микромицета использовали 3 вида питательных сред, в основу которых входила соевая окара и дополнительные источники целлюлозы – лузга подсолнечника, лузга пшеницы (отруби) и лузга риса. В качестве показателей, характеризующих эффективность применения микромицета и субстрата проводили определение целлюлозолитической активности (ГОСТ Р 53046-2008) и содержание протеина (ГОСТ Р 51417-99) в полученной смеси.

Обсуждение результатов. Результаты твердофазной ферментации гриба
Trichoderma viride на различных питательных средах представлены в таблице 1.

Культивирование гриба Trichoderma viride на различных питательных средах

ХАРАКТЕРИСТИКА ПОТЕНЦИАЛЬНО ПАТОГЕННЫХ ВИДОВ TRICHODERMA, ВЫДЕЛЕННЫХ НА ТЕРРИТОРИИ РЕСПУБЛИКИ ТАТАРСТАН

Казанский государственный университет им. В.И. Ульянова-Ленина

Все чаще виды Trichoderma признаются патогенными в иммунологической супрессии хозяина. Среди сапрофитных видов рода Trichoderma некоторые изоляты, например, T. viride, вызывают у людей аллергические заболевания верхних дыхательных путей. Некоторые штаммы T. viride, T. koningii, T. longibrachiatum, являются возбудителями перитонита. Они участвуют в продолжительном амбулаторном перитоническом диализе, ассоциированном с перитонитами и инфекциями иммуновосприимчивых пациентов с гематологической злокачественной опухолью или при трансплантации органов. T. longibrachiatum является основным участником этих инфекционных процессов. Есть данные о несмертельной легочной инфекции, вызванной T. viride у пациента с лейкемией.
Целью нашей работы было исследование распространения потенциально опасных видов Trichoderma (T. viride, T. koningii, T. longibrachiatum) на территории Республики Татарстан, изучение их культурально-морфологических признаков, структуры популяций выделенных изолятов.
Нами было выделено свыше 700 изолятов Trichoderma из образцов почв и подстилок археологических раскопок, государственного Раифского заповедника, агроценозов и антропогенных ландшафтов.
В результате исследований была отмечена высокая частота встречаемости изолятов T. koningii, T. longibrachiatum, T. viride в эталонных почвах и защищенных грунтах. Антропогенные ландшафты – агроценозы и почвы вдоль автотрасс, нефтезагрязненные почвы и нефтешламы — характеризовались снижением популяционного уровня Trichoderma более чем в 100 раз и снижением частоты встречаемости.
Идентификация по морфологическим признакам выделенных изолятов показала, что наиболее распространенным и часто встречающимся оказался вид T. koningii (23%). На втором месте по распространенности стоит T. longibrachiatum (13%), а далее следует T. viride (2%).
Виды группы T. koningii и T. viride чаще встречались в прохладной климатической зоне, а в более южных областях количество пропагул этого вида сокращалось. Изоляты T. longibrachiatum чаще выделялись в умеренно-теплой и теплой зонах.
Существование генетически гомогенных популяций в природных условиях проблематично. В геноме одной клетки может быть уже заложена способность расщепления на варианты. Известно, что повышение гетерогенности является адаптивным фактором, способствующим распространению изолятов Trichoderma.
Для оценки популяционных различий в пределах одного вида мы провели сравнение морфометрических параметров изолятов из разных климатических зон и экологических ниш.
При сравнении выборок выяснили, что внутри популяций из разных климатических зон Республики Татарстан нет достоверных различий в размерах конидий.
Мы провели сравнительный анализ размеров конидий изолятов T. viride, T. koningii, T. longibrachiatum, выделенных на территории Республики Татарстан (РТ), изолятов, распространенных на территории России (Александрова, 2000), и изолятов, распространенных на различных территориях, описанных Samuels (2002). Отмечена достоверная разница между конидиями только по ширине. Так, конидии изолятов группы T. koningii из РТ — более крупные и более округлые, чем конидии, описанные Александровой (2000) и Samuels (2002). Аналогичную картину наблюдали при анализе конидий изолятов других видов. Известно, что в условиях почвы наибольшей выживаемостью обладают более мелкие формы, которые обладают повышенной адаптационной способностью и летучестью, что способствует расширению ареала распространения.
Анализ морфометрических параметров изолятов, выделенных из эталонных почв, антропогенных ландшафтов и современных горизонтов почв показал, что размеры конидий изолятов, полученных из современных почвенных горизонтов, уменьшаются.
Популяции грибов представляют собой мозаику клонов. Культурально-морфологические типы колоний, реакции вегетативной совместимости и гетерокариоз являются одними из изолирующих механизмов. Мицелиальные грибы формируют анастомозы, что играет важную роль в адаптации грибов. Установлено, что парасексуальная рекомбинация между тесно связанными видами и предположительно несовместимыми штаммами некоторых видов более выражена под влиянием стрессов среды.
Исследованы природные гетерогенные популяции T. longibrahiatum, T. viride, T. koningii и их расщепление на клоны. Выделены 2 стабильных культурально–морфологических типа из раннее описанных четырех. Гетероспоровые популяции в большей степени (54%) были представлены вторым культурально–морфологическим типом, из них 20% приходилось на изоляты T. koningii, по 6,6% пришлось на изоляты T. longibrahiatum и T. viride.
К четвертому типу принадлежали 19,2% изолятов T. koningii, 11,5% изолятов T. viride.
При исследовании взаимодействия между гетероспоровыми популяциями и моноспоровыми клонами обнаружены различные реакции вегетативной совместимости: образование мицелиального валика из гиф воздушного мицелия, взаимное проникновение мицелия (нейтральная или индифферентная реакция), а также реакции несовместимости — барраж, бордюр и ограничение роста. Вегетативная совместимость типа валик выявлена у 3,6% изолятов T. koningii. Вегетативная несовместимость типа бордюр выявлена у 1,8% изолятов T. longibrahiatum, 3,8% изолятов T. viride; барраж – у 5,3% изолятов T. koningii.
В связи с многоядерностью клеток и отсутствием препятствий на пути миграции ядер у грибов широкое развитие получило явление гетерокариоза. Отмечалась генетическая неоднородность ядер, внешним проявлением которой являлось скачкообразное возникновение сальтантов (неустойчивых или лабильных штаммов и гетеротипов). На поверхности колоний отмечалось образование секторов, отличающихся характером роста или окраской, внезапно проявляющихся в моноспоровых культурах на некотором расстоянии от центра колонии. Так, отмечалось образование светло-окрашенных секторов, которые называют аберрантными пятнами мицелия.

forum.wormcafe.ru

Компостеры, вермикомпостеры, вермикомпостирование и вермикультивирование, природное земледелие

  • Список форумовОсновной форум WORMCAFE.RUВермитехнологии
  • Изменить размер шрифта
  • Версия для печати
  • FAQ
  • Регистрация
  • Вход

триходерма и червячки

триходерма и червячки

Янина » 15 сен 2015, 09:21

триходерма и червячки

Янина » 15 сен 2015, 17:46

триходерма и червячки

Дмитричь » 15 сен 2015, 20:04

триходерма и червячки

Дмитричь » 16 сен 2015, 15:45

триходерма и червячки

Янина » 16 сен 2015, 19:45

триходерма и червячки

Дмитричь » 24 сен 2015, 09:15

триходерма и червячки

Янина » 25 сен 2015, 11:17

триходерма и червячки

krot » 03 окт 2015, 17:51

триходерма и червячки

EON » 03 окт 2015, 21:28

Спасибо за ваш материал. А где купить?
Вот нашёл в интернете:

Биологический энциклопедический словарь
ТРИХОДЕРМА
Толкование
ТРИХОДЕРМА
(Trichoderma), род гифомицетов. Мицелий бесцветный. Конидиеносцы вертикальностоящие, разветвлённые, бесцветные. Конидии одноклеточные, собраны в округлые головки. Сапротрофы в почве и на древесине, нек-рые паразитируют на др. грибах. 9 видов. Распространены широко. Из нек-рых видов Т. получают препарат триходермин, применяемый для борьбы с корневыми гнилями с.-х. растений, возможно его использование против вилта хлопчатника.
.(Источник: «Биологический энциклопедический словарь.» Гл. ред. М. С. Гиляров; Редкол.: А. А. Бабаев, Г. Г. Винберг, Г. А. Заварзин и др. — 2-е изд., исправл. — М.: Сов. Энциклопедия, 1986.)

Материал из Википедии — свободной энциклопедии
Триходермин — биологический фунгицид для защиты растений от фитопатогенов, вызывающих заболевания альтернариозом, антракнозом, аскохитозом, белой гнилью, вертициллезом, питиозом, ризоктониозом, серой гнилью, фитофторозом, фомозом и т. д.
Механизм действия триходермина основан на подавлении развития фитопатогенов грибом Trichoderma viride Pers. [syn. Trichoderma lignorum (Tode) Harz] из порядка гипокрейных. Это подавление осуществляется прямым паразитированием, конкуренцией за субстрат, а также выделением биологически активных веществ, угнетающих развитие возбудителей заболеваний и тормозящих их репродуктивную способность.

Триходермин-биологическое средство защиты растений.

Рекомендуется для обработки семян (предпосевной и при закладке на хранение), для внесения в почву, особенно в защищенном грунте и для профилактической обработки растений всех видов садовых и с\х культур, цветов и рассады.

Триходермин подавляет широкий спектр (около 60 видов) болезней на разных культурах.

Помимо защитного действия триходермин также обеззараживает почву – уменьшает число вредных микрооранизмов (гнилостные бактерии), связывает соли минеральных удобрений, в результате заболеваемость растений снижается в 2,5-3 раза; повышает плодородье почвы – улучшает ее водно-воздушный режим, увеличивает число полезных микроорганизмов (азотобактера и др), которые насыщают почву азотом и углеродом, разлагая органические остатки.

Действующее вещество «Триходермина»: культуральная жидкость, содержащая споры и мицелий гриба-антагониста Trichoderma lignorum, а также продуцируемые культурой гриба в процессе производственного культивирования биологически активные вещества.

Гриб Trichoderma lignorum подавляет патогены, передающиеся через почву и растительные остатки. Он паразитирует на склероциях гриба Sclerotinia sclerotiorum, псевдосклероциях гриба Rhizoctonia solani, активен в отношении грибов родов Alternaria, Ascochyta, Botrytis, Colletotrichum, Fusarium, Helminthosporium, Pythium, Phoma, Phytophthora, Verticillium. Получены положительные результаты от применения Триходермина в борьбе с грибами рода Cytospora, вызывающих рак и усыхание побегов косточковых пород.

Для профилактики: содержимое пакета внести в грунт перед посадкой растения (5 г на 5 л почвы).

Для лечения: необходимо приготовить водную суспензию триходермина (5 г на 5 л воды). Освободить корни растения от почвы, обрезать все мелкие потемневшие корни, промыть в суспензии и пересадить в другой горшочек со свежим субстратом.

Овощные и цветочно-декоративные культуры

1. Предпосевная обработка семян. Норма расхода: 20 мл препарата / кг семян.

2. Внесение в питательную смесь при посеве. Норма расхода: 2 мл препарата / горшочек.

3. Обработка корневой системы рассады путем обмакивания ее в болтушку, приготовленную из почвы и перегноя (в соотношении 2:1), воды и Триходермина. Норма расхода: 5 мл препарата / растение.

4. Внесение в лунки при высадке рассады на постоянное место. Норма расхода: 5 мл препарата / растение.

5. Полив растений. Норма расхода: 100 мл препарата / 10 л воды.

6. Опрыскивание растений, начиная с фазы двух настоящих листьев, каждые 10 — 20 дней, в зависимости от прогноза на интенсивность развития болезней. Норма расхода: 100 — 300 мл препарата / 10 л воды или 5 — 15 л / га.

Опрыскивание растений, начиная с фазы распускания почек, каждые 10 — 20 дней, в зависимости от прогноза на интенсивность развития болезней. Норма расхода: 100 мл препарата / 10 л воды или 5 л / га.

Опрыскивание растений, начиная с фазы распускания почек, каждые 10 — 20 дней, в зависимости от прогноза на интенсивность развития болезней. Норма расхода: 50 мл препарата / 10 л воды или 2 — 3 л / га.
Меры предосторожности:

Токсичность «Триходермина» . Препарат относится к малоопасным соединениям для теплокровных животных (4 класс опасности), безопасен для полезной энтомофауны и пчел, не вызывает ожогов у растений.

Меры предосторожности. При работе с препаратом использовать перчатки. Во время работы нельзя пить, курить, принимать пищу. После работы вымыть лицо и руки с мылом, прополоскать рот. При попадании препарата на кожу или в глаза — смыть большим количеством воды. При случайном попадании в организм человека выпить несколько стаканов воды, вызвать рвоту. Обратиться к врачу.

Гарантийный срок хранения. Препарат сохраняет свойства в цельной упаковке не менее 3-х лет (при температуре +5 С – до 5 лет), в виде раствора при температуре +5 С до 1 месяца. Хранить в местах, недоступных для детей и домашних животных.

триходерма и червячки

Янина » 06 окт 2015, 08:37

триходерма и червячки

EON » 06 окт 2015, 21:17

триходерма и червячки

Дмитричь » 06 окт 2015, 21:39

триходерма и червячки

Дмитричь » 10 окт 2015, 22:04

триходерма и червячки

Янина » 12 окт 2015, 13:50

триходерма и червячки

Дмитричь » 13 окт 2015, 00:49

Вот как я делал последний раз.
Беру где-то кило овса, и варю в мультиварке 20 минут. Утром следующего дня закладываю в пакет, давлю пальцами таблетку глиокладина, завязываю пакет и часто дырявлю его со всех сторон. Укладываю пакет на яичную решетку в тазике и накрываю тазик тряпкой. Жду 7-10 дней, на 7-10 день пахнет не сильно, но явно, смешиваю с размороженным кормом и в тазик накрытый тряпкой и под ванну, 2-3 дня и запах (винегретный) сильный. Закладываю в ящик с червями, к вечеру уже вовсю чавкают, через день запах исчезает, если сразу же полить вермичаем, запах исчезает к вечеру. Гриндаль развелся, мушка-комарики не исчезли. Поправляйте, учите, буду пробовать.

Меня зовут Сергеем, а вот папу звали Димой

триходерма и червячки

Янина » 13 окт 2015, 06:58

триходерма и червячки

Янина » 13 окт 2015, 07:41

триходерма и червячки

Дмитричь » 25 окт 2015, 22:43

триходерма и червячки

Янина » 26 окт 2015, 15:42

триходерма и червячки

Янина » 29 окт 2015, 15:44

Кто сейчас на конференции

Сейчас этот форум просматривают: нет зарегистрированных пользователей и гости: 3

Добавить комментарий
Классы МПК: A01N63/04 плесневые грибы или экстракты из них
C12N1/14 микробные грибки; питательные среды для них
Автор(ы): Коломбет Л.В. , Ежов Д.В. , Жиглецова С.К. , Быстрова Е.В. , Косарева Н.И.
Патентообладатель(и): Государственный научный центр прикладной микробиологии
Приоритеты: